功能学科实验教程 的毛,再用干纱布将水擦干,涂上一层油脂。一般脱过被毛部位的皮肤很少发生皮肤 充血、炎症等现象。脱毛部位被毛在脱毛前一定不要用水洗,以免因水洗后,脱毛剂 会渗透入皮肤毛根里,刺激皮肤,造成皮肤炎症等变化。 手术 功能学科实验中常用的手术有以下几种: 1.皮肤切开动物麻醉固定后,用粗剪刀(家用剪)贴住皮肤剪去手术部位毛 发(不要拎起毛发剪,这样会剪到皮肤),在切口沿线的中点两侧旁开各0.5cm处 分别用血管钳侧夹起皮肤,并向两侧拉开、提起使成“一”字型皱褶,用手术剪在皱 褶中点的皮肤上剪一小口,将剪刀并拢伸进切口,使剪刀宽面贴住皮肤内面并挑起 然后撑开剪刀,以使皮肤和皮下组织分离(此即为钝性分离方法)。在皮肤与皮下组 织分离后,再用剪刀刀刃沿切口线水平地挑起皮肤(忌剪刀尖向下,以避免伤及皮下 组织和血管)再行剪开,剪至切口的一侧终点后,向反方向作同样操作,直至达到切 口要求的长度。钝性分离下面的组织,尤其是肌肉组织,勿使用剪刀以免出血。 2.颈部手术颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离 颈部神经等 (1)气管插管术(家兔):动物取仰卧位,按上述皮肤切开方法,自喉部下缘至 胸骨柄上缘,沿颈部正中作一5~7cm长的切口,钝性分离皮下组织,于正中线分开 肌肉,暴露并游离出一段气管,剥离干净气管表面的筋膜组织(否则剪口时易出血, 且血液会流入气管影响呼吸),于气管下穿较粗的棉线备用:在甲状软骨下约lcm处 剪一“⊥”型切口,插入“Y”形气管插管,注意插管插入时应使插入端的斜口向下, 插入2~3cm后将插管旋转180度,使插入端的斜口向上,并用先前穿好的备用线扎 紧,再将余线绕气管插管的分叉处扎紧打结,以防滑脱。 (2)颈动脉插管(家兔):将上述切口边缘的皮肤连带下方的肌肉组织向外侧拉 开,即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘,在鞘内,颈总动脉与颈静脉、颈迷 走神经、降压神经伴行在一起。应先将颈总动脉鞘分离出来,再从鞘内分离出颈总动 脉,剥尽周围结缔组织和筋膜,游离出长3~4cm的颈总动脉,尽可能向远心端游离; 在动脉下穿2根结扎线,用其中一根结扎远心端,用动脉夹夹住其近心端,结扎处与 动脉夹夹闭间的颈总动脉长度约需3cm。用眼科镊柄垫在颈总动脉下方,用眼科剪在 远心端结扎线的近心侧0.2~03cm处的动脉壁上作一向心方向的斜切口,切口约为 管径的一半。取一动脉导管,事先在距导管口上方15cm处裹贴一圈胶布,将动脉导 管充满肝素溶液,并注意排尽管内气体,将管尖由切口向心脏方向插入动脉内。用已
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 22 的毛，再用干纱布将水擦干，涂上一层油脂。一般脱过被毛部位的皮肤很少发生皮肤 充血、炎症等现象。脱毛部位被毛在脱毛前一定不要用水洗，以免因水洗后，脱毛剂 会渗透入皮肤毛根里，刺激皮肤，造成皮肤炎症等变化。 二、手 术 功能学科实验中常用的手术有以下几种： 1．皮肤切开 动物麻醉固定后，用粗剪刀（家用剪）贴住皮肤剪去手术部位毛 发（不要拎起毛发剪，这样会剪到皮肤），在切口沿线的中点两侧旁开各 0.5cm 处， 分别用血管钳侧夹起皮肤，并向两侧拉开、提起使成“一”字型皱褶，用手术剪在皱 褶中点的皮肤上剪一小口，将剪刀并拢伸进切口，使剪刀宽面贴住皮肤内面并挑起， 然后撑开剪刀，以使皮肤和皮下组织分离（此即为钝性分离方法）。在皮肤与皮下组 织分离后，再用剪刀刀刃沿切口线水平地挑起皮肤（忌剪刀尖向下，以避免伤及皮下 组织和血管）再行剪开，剪至切口的一侧终点后，向反方向作同样操作，直至达到切 口要求的长度。钝性分离下面的组织，尤其是肌肉组织，勿使用剪刀以免出血。 2．颈部手术 颈部手术主要包括气管插管、颈动脉插管、颈外静脉插管和分离 颈部神经等。 （1）气管插管术（家兔）：动物取仰卧位，按上述皮肤切开方法，自喉部下缘至 胸骨柄上缘，沿颈部正中作一 5～7cm 长的切口，钝性分离皮下组织，于正中线分开 肌肉，暴露并游离出一段气管，剥离干净气管表面的筋膜组织（否则剪口时易出血， 且血液会流入气管影响呼吸），于气管下穿较粗的棉线备用；在甲状软骨下约 1cm 处 剪一“⊥”型切口，插入“Y”形气管插管，注意插管插入时应使插入端的斜口向下， 插入 2~3cm 后将插管旋转 180 度，使插入端的斜口向上，并用先前穿好的备用线扎 紧，再将余线绕气管插管的分叉处扎紧打结，以防滑脱。 （2）颈动脉插管（家兔）：将上述切口边缘的皮肤连带下方的肌肉组织向外侧拉 开，即可见在气管两侧纵行的左、右颈总动脉鞘，在鞘内，颈总动脉与颈静脉、颈迷 走神经、降压神经伴行在一起。应先将颈总动脉鞘分离出来，再从鞘内分离出颈总动 脉，剥尽周围结缔组织和筋膜，游离出长 3～4cm 的颈总动脉，尽可能向远心端游离； 在动脉下穿 2 根结扎线，用其中一根结扎远心端，用动脉夹夹住其近心端，结扎处与 动脉夹夹闭间的颈总动脉长度约需 3cm。用眼科镊柄垫在颈总动脉下方，用眼科剪在 远心端结扎线的近心侧 0.2～0.3cm 处的动脉壁上作一向心方向的斜切口，切口约为 管径的一半。取一动脉导管，事先在距导管口上方 1.5cm 处裹贴一圈胶布，将动脉导 管充满肝素溶液，并注意排尽管内气体，将管尖由切口向心脏方向插入动脉内。用已
功能学科实验教程 穿好的线在动脉切口的近心侧05cm处扎紧血管,并将剩余线段沿导管平行拉直,在 平齐于胶布圈的远心缘用血管钳夹住双线段,在此处将两根线相互打一死结(此结应 与胶布圈的远心缘平齐),再将余线绕在胶布圈远心侧的导管上打结固定,以藉此线 段拉住导管防止其滑脱。使动脉插管与动脉保持在同一直线上,然后将动脉导管作适 当固定。注意保持动脉插管的通畅 (3)分离迷走神经、交感神经、降压神经(家兔):迷走神经、交感神经和降 压神经与颈总动脉伴行,行走于同一颈总动脉鞘内。仔细辨认三条神经,颈迷走神经 最粗,颈交感神经次之,降压神经最细,且常与颈交感神经紧贴在一起,一般位于迷 走和交感神经之间。通常最先用玻璃分针分离最细的降压神经,然后分离颈迷走神经、 交感神经和颈总动脉。每根神经、血管分离出3~4cm长,并在各神经、血管下穿 条不同颜色的细丝线备用。 3.家兔腹部手术主要用于分离膈肌、肠系膜微循环观察和作输尿管插管术等。 (1)膈肌暴露术:动物取仰卧位,剪去胸腹部交界处手术部位兔毛,摸到剑突 后,在其表面沿正中线纵行切开皮肤2~3cm(切口不宜过大,以免内脏涌出),用止 血钳分离皮下组织及腹壁肌,暴露剑突。将剑突轻轻拉出,剪去其上牵连的筋膜,将 剑突向头端方向拎起,即可见剑突背侧的膈肌 (2)肠系膜微循环观察术:于耻骨联合上约2cm处起,向上沿腹白线作一长5 6cm的切口,逐层分离进入腹腔,推开粗大深灰色的盲肠,找到回盲部,此处有一灰 白色的圆形球囊,称圆小囊;或直接找到粗大(直径约15cm,长约7~8cm)、光滑 无皱褶、实质感强、呈灰红色、末端为盲端的阑尾(又称引突)。选取由阑尾通过筋 膜牵连着的、由其盲端指向的一段小肠,此处肠系膜长,脂肪少,血管丰富,便于微 循环观察。将此段小肠暂置腹腔外,将其余肠子纳回腹腔,用血管钳夹闭肠段两侧的 皮肤切口。将此段小肠的系膜展开,平铺于肠系膜灌流盒中的载物台上,用于肠系膜 微循环观察。 (3)输尿管插管术:在耻骨联合上缘沿腹部正中线向上作5cm长的纵行皮肤切 口,沿腹白线切开腹腔,将膀胱慢慢移岀体外,暴露膀胱三角,仔细辨认输尿管,将 一侧输尿管与周围组织轻轻分离。穿双线备用,先用一根线结扎输尿管近膀胱端,在 结扎处近肾侧的输尿管上剪一斜切口,切口约为管径一半,把充满01%肝素溶液的 细塑料管向肾脏方向插入输尿管内,并结扎固定,随后可见尿液从细塑料管内慢慢逐 滴流出。术毕用浸润温热生理盐水(38℃左右)的纱布覆盖腹部切口,以保持腹腔内 温度。 4.家兔腹股沟手术主要用于作股动脉或股静脉插管。股动脉和股静脉插管与 颈动脉插管类似,所不同的是位置的区别。先在大腿根部近腹股沟处摸到股动脉搏动 23
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 23 穿好的线在动脉切口的近心侧 0.5cm 处扎紧血管，并将剩余线段沿导管平行拉直，在 平齐于胶布圈的远心缘用血管钳夹住双线段，在此处将两根线相互打一死结（此结应 与胶布圈的远心缘平齐），再将余线绕在胶布圈远心侧的导管上打结固定，以藉此线 段拉住导管防止其滑脱。使动脉插管与动脉保持在同一直线上，然后将动脉导管作适 当固定。注意保持动脉插管的通畅。 （3）分离迷走神经、交感神经、降压神经（家兔）：迷走神经、交感神经和降 压神经与颈总动脉伴行，行走于同一颈总动脉鞘内。仔细辨认三条神经，颈迷走神经 最粗，颈交感神经次之，降压神经最细，且常与颈交感神经紧贴在一起，一般位于迷 走和交感神经之间。通常最先用玻璃分针分离最细的降压神经，然后分离颈迷走神经、 交感神经和颈总动脉。每根神经、血管分离出 3~4cm 长，并在各神经、血管下穿一 条不同颜色的细丝线备用。 3．家兔腹部手术 主要用于分离膈肌、肠系膜微循环观察和作输尿管插管术等。 （1）膈肌暴露术：动物取仰卧位，剪去胸腹部交界处手术部位兔毛，摸到剑突 后，在其表面沿正中线纵行切开皮肤 2～3cm（切口不宜过大，以免内脏涌出），用止 血钳分离皮下组织及腹壁肌，暴露剑突。将剑突轻轻拉出，剪去其上牵连的筋膜，将 剑突向头端方向拎起，即可见剑突背侧的膈肌。 （2）肠系膜微循环观察术：于耻骨联合上约 2cm 处起，向上沿腹白线作一长 5～ 6cm 的切口，逐层分离进入腹腔，推开粗大深灰色的盲肠，找到回盲部，此处有一灰 白色的圆形球囊，称圆小囊；或直接找到粗大（直径约 1.5cm，长约 7～8cm）、光滑 无皱褶、实质感强、呈灰红色、末端为盲端的阑尾（又称引突）。选取由阑尾通过筋 膜牵连着的、由其盲端指向的一段小肠，此处肠系膜长，脂肪少，血管丰富，便于微 循环观察。将此段小肠暂置腹腔外，将其余肠子纳回腹腔，用血管钳夹闭肠段两侧的 皮肤切口。将此段小肠的系膜展开，平铺于肠系膜灌流盒中的载物台上，用于肠系膜 微循环观察。 （3）输尿管插管术：在耻骨联合上缘沿腹部正中线向上作 5cm 长的纵行皮肤切 口，沿腹白线切开腹腔，将膀胱慢慢移出体外，暴露膀胱三角，仔细辨认输尿管，将 一侧输尿管与周围组织轻轻分离。穿双线备用，先用一根线结扎输尿管近膀胱端，在 结扎处近肾侧的输尿管上剪一斜切口，切口约为管径一半，把充满 0.l％肝素溶液的 细塑料管向肾脏方向插入输尿管内，并结扎固定，随后可见尿液从细塑料管内慢慢逐 滴流出。术毕用浸润温热生理盐水（38℃左右）的纱布覆盖腹部切口，以保持腹腔内 温度。 4．家兔腹股沟手术 主要用于作股动脉或股静脉插管。股动脉和股静脉插管与 颈动脉插管类似，所不同的是位置的区别。先在大腿根部近腹股沟处摸到股动脉搏动
功能学科实验教程 点,局部剪毛,以搏动最明显处为中点沿血管走行的方向作长约4cm的切口。股动 脉、股静脉、股神经行走于同一鞘内,位置比较表浅,切开皮肤后,即能隐约见到与 大腿纵轴平行、行走于筋膜下的股动脉鞘。细心挑开筋膜,注意勿损伤下面的血管和 神经,先完整挑出股动脉鞘,再在鞘下方垫以撑开的镊子或血管钳,用玻璃分针小心 地逐根进行分离。其余方法与颈动脉插管相同 5.制备蟾蜍坐骨神经、腓神经标本 (1)破坏脑和脊髓:左手持蟾蜍,腹部向下,中指在下向腹部压住双上肢,小 指在上压住双下肢(夹在小指和无名指之间),用拇指压住背部,用食指向下压住其 吻部,使头与躯体成一定角度,充分暴露枕骨大孔部。用探针针尖沿头背部正中向下 滑动,在两侧耳后缘连线前约3mm处可触到一条横沟,将探针于横沟中央处经枕骨 大孔向前刺入颅腔,探针向前稍向下左右搅动破坏脑。检验脑己破坏的标志是蟾蜍的 角膜反射消失。然后将探针回抽至枕骨大孔,再转向后方插进椎管,边向尾椎推进边 捻转,以损毁脊髓。如脊髓功能被完全破坏,则动物的四肢瘫软。 (2)制备粗制标本:在蟾蜍的骶髂关节水平以上1cm处,用粗剪刀(家用剪) 的一个尖端刺穿脊柱两侧皮肤,剪断脊柱,并将头和前肢连同所有内脏剪去。用左手 拇指及食指夹住脊柱,右手由断面开始将皮肤与肌肉分离,向趾端方向剥去皮肤。用 镊子提起泄殖孔部组织,用粗剪刀由泄殖孔处向上剪去尾骨,暴露左右两束坐骨神经 避开坐骨神经,用粗剪刀从背侧剪去骶骨,然后沿中线将脊柱剪成左右两半,再从耻 骨联合中央剪开。将已分离的粗标本浸入任氏液中备用。 (3)分离坐骨神经和腓神经:将上述粗制标本俯置于蛙板上,用蛙钉固定后肢 趾端及脊柱,再在其下肢股部背侧二头肌和半膜肌之间,用玻璃针分离出坐骨神经, 分离方向应由中枢端向外周。坐骨神经完全暴露后,用线在靠近脊柱处将坐骨神经结 扎,提起结扎线,将根端剪断。轻轻提起结扎线(使相连的坐骨神经干呈松弛状态, 切忌紧拉神经以免神经受损),用眼科剪逐一剪断坐骨神经分支,游离并取下坐骨神 经和与之相连的腓浅神经。分离过程中,操作必须精细,切忌用力牵拉和钳夹神经 神经标本尽可能长些,离体的神经忌用金属物品触碰。将神经干置于标本槽的电极上 盖上盖板,以防神经干燥 6.分离豚鼠坐骨神经、颅骨钻孔 (1)豚鼠麻醉后取俯卧位,剪去手术部位毛发,在右后肢沿大腿后外側纵轴切 开皮肤,于股二头肌和半膜肌之间找到坐骨神经并用玻璃分针将其分离,穿线,然后 将分离的坐骨神经置于保护电极上。 (2)剪去豚鼠头顶部毛发,在头顶正中纵向切开豚鼠头皮,暴露颅骨,用刀柄 钝性分离骨膜,暴露颅骨缝,用颅骨钻在冠状缝与矢状缝交界处左后外侧,离冠状缝
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 24 点，局部剪毛，以搏动最明显处为中点沿血管走行的方向作长约 4cm 的切口。股动 脉、股静脉、股神经行走于同一鞘内，位置比较表浅，切开皮肤后，即能隐约见到与 大腿纵轴平行、行走于筋膜下的股动脉鞘。细心挑开筋膜，注意勿损伤下面的血管和 神经，先完整挑出股动脉鞘，再在鞘下方垫以撑开的镊子或血管钳，用玻璃分针小心 地逐根进行分离。其余方法与颈动脉插管相同。 5．制备蟾蜍坐骨神经、腓神经标本 （1）破坏脑和脊髓：左手持蟾蜍，腹部向下，中指在下向腹部压住双上肢，小 指在上压住双下肢（夹在小指和无名指之间），用拇指压住背部，用食指向下压住其 吻部，使头与躯体成一定角度，充分暴露枕骨大孔部。用探针针尖沿头背部正中向下 滑动，在两侧耳后缘连线前约 3mm 处可触到一条横沟，将探针于横沟中央处经枕骨 大孔向前刺入颅腔，探针向前稍向下左右搅动破坏脑。检验脑己破坏的标志是蟾蜍的 角膜反射消失。然后将探针回抽至枕骨大孔，再转向后方插进椎管，边向尾椎推进边 捻转，以损毁脊髓。如脊髓功能被完全破坏，则动物的四肢瘫软。 （2）制备粗制标本：在蟾蜍的骶髂关节水平以上 1cm 处，用粗剪刀（家用剪） 的一个尖端刺穿脊柱两侧皮肤，剪断脊柱，并将头和前肢连同所有内脏剪去。用左手 拇指及食指夹住脊柱，右手由断面开始将皮肤与肌肉分离，向趾端方向剥去皮肤。用 镊子提起泄殖孔部组织，用粗剪刀由泄殖孔处向上剪去尾骨，暴露左右两束坐骨神经。 避开坐骨神经，用粗剪刀从背侧剪去骶骨，然后沿中线将脊柱剪成左右两半，再从耻 骨联合中央剪开。将已分离的粗标本浸入任氏液中备用。 （3）分离坐骨神经和腓神经：将上述粗制标本俯置于蛙板上，用蛙钉固定后肢 趾端及脊柱，再在其下肢股部背侧二头肌和半膜肌之间，用玻璃针分离出坐骨神经， 分离方向应由中枢端向外周。坐骨神经完全暴露后，用线在靠近脊柱处将坐骨神经结 扎，提起结扎线，将根端剪断。轻轻提起结扎线（使相连的坐骨神经干呈松弛状态， 切忌紧拉神经以免神经受损），用眼科剪逐一剪断坐骨神经分支，游离并取下坐骨神 经和与之相连的腓浅神经。分离过程中，操作必须精细，切忌用力牵拉和钳夹神经。 神经标本尽可能长些，离体的神经忌用金属物品触碰。将神经干置于标本槽的电极上， 盖上盖板，以防神经干燥。 6．分离豚鼠坐骨神经、颅骨钻孔 （1）豚鼠麻醉后取俯卧位，剪去手术部位毛发，在右后肢沿大腿后外側纵轴切 开皮肤，于股二头肌和半膜肌之间找到坐骨神经并用玻璃分针将其分离，穿线，然后 将分离的坐骨神经置于保护电极上。 （2）剪去豚鼠头顶部毛发，在头顶正中纵向切开豚鼠头皮，暴露颅骨，用刀柄 钝性分离骨膜，暴露颅骨缝，用颅骨钻在冠状缝与矢状缝交界处左后外侧，离冠状缝
功能学科实验教程 略后的位置钻一圆孔(钻孔时切忌用力过猛,以免损伤皮层影响电位引导),暴露 侧大脑体感区皮层。 第六节实验动物的采血方法 常见实验动物的最大安全采血量与最小致死采血量见表3-6-1。一次采血过多或 连续多次采血都可影响动物健康,造成贫血或导致死亡,须予注意。 表3-6-1实验动物的采血量 动物种类 最大安全采血量(m1) 最小致死采血量(ml) 0.1 大鼠 5 家兔 10 大鼠、小鼠的采血法 1.尾尖取血当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾,将鼠尾在45 ℃温水中浸泡数分钟,也可用二甲苯等化学药物涂擦,使尾部血管扩张。将鼠尾擦干, 剪去尾尖,血自尾尖流出,让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间, 多次采取鼠尾尖部血液,每次采血时,将鼠尾剪去很小一段,取血后,先用棉球压迫 止血并立即用6%液体火棉胶涂于尾巴伤口处,使伤口外结一层火棉胶薄膜,保护伤 口。也可采用切割尾静脉的方法采血,三根尾静脉可交替切割,并自尾尖向尾根方向 切割,每次可取02~0.3m血,切割后用棉球压迫止血(图3-6-1)。这种采血方法在 大鼠进行较好,可以较长的间隔时间连续取血,进行血常规检査。 图3-6-1鼠尾静脉取血法
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 25 略后的位置钻一圆孔（钻孔时切忌用力过猛，以免损伤皮层影响电位引导），暴露一 侧大脑体感区皮层。 第六节 实验动物的采血方法 常见实验动物的最大安全采血量与最小致死采血量见表 3-6-1。一次采血过多或 连续多次采血都可影响动物健康，造成贫血或导致死亡，须予注意。 表 3-6-1 实验动物的采血量 动物种类 最大安全采血量（m1） 最小致死采血量（ml） 小鼠 0.1 0.3 大鼠 1 2 豚鼠 5 10 家兔 10 40 狗 50 300 猴 15 60 一、大鼠、小鼠的采血法 1．尾尖取血 当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾，将鼠尾在 45 ℃温水中浸泡数分钟，也可用二甲苯等化学药物涂擦，使尾部血管扩张。将鼠尾擦干， 剪去尾尖，血自尾尖流出，让血液滴入盛器或直接用移液器吸取。如需间隔一定时间， 多次采取鼠尾尖部血液，每次采血时，将鼠尾剪去很小一段，取血后，先用棉球压迫 止血并立即用 6％液体火棉胶涂于尾巴伤口处，使伤口外结一层火棉胶薄膜，保护伤 口。也可采用切割尾静脉的方法采血，三根尾静脉可交替切割，并自尾尖向尾根方向 切割，每次可取 0.2~0.3ml 血，切割后用棉球压迫止血（图 3-6-1）。这种采血方法在 大鼠进行较好，可以较长的间隔时间连续取血，进行血常规检查。 图 3-6-1 鼠尾静脉取血法
功能学科实验教程 2.眼眶后静脉丛取血当需中等量的血液,而又需避免动物死亡时采用此法。 用左手固定鼠,尽量捏紧头部皮肤,使头固定,并轻轻向下压迫颈部两侧,引起头部 静脉血液回流困难,使眼球充分外突(使眼眶后静脉丛充血),右手持毛细玻璃管, 沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入(图3-6-2)。刺入深度小鼠2~3mm,大鼠4-5mm。 当感到有阻力时再稍后退,保持水平位,稍加吸引,由于血压的关系,血液即流入玻 璃管中。得到所需的血量后,拔出毛细管。若手法恰当,小鼠约可采血02~0.3ml, 大鼠约可采血04~06ml。 图3-6-2鼠眼眶取血法 3.断头取血当需要较大量的血液,而又不需继续保存动物生命时采用此法 左手捉持动物,使其头略向下倾,右手持剪刀猛力剪掉鼠头,让血液滴入盛器。小鼠 可采血0.8~10ml,大鼠可采用5-8ml 4.眶动脉和眶静脉取血此法既能采取较大量的血液,又可避免断头取血法中 因组织液的混入导致溶血的现象,现常取代断头取血法。先使动物眼球突出充血后, 以弯头眼科镊迅速钳取眼球,并将鼠倒置,头向下,眼眶内很快流出血液,让血液滴 入盛器,直至不流为止。此法由于取血过程中动物未死,心脏不断在跳动,因此取血 量比断头法多,一般可取鼠体重4-5%的血液量,是一种较好的取血方法。 5.心脏取血动物仰卧固定在固定板上,剪去心前区部位的被毛,用碘酒酒精 消毒皮肤。在左侧第3~4肋间,用左手食指摸到心搏处,右手取连有4~-5号针头的注 射器,选择心搏最强处穿刺,当针刺入心脏时,血液由于心脏跳动的力量自动进入注 射器。此法要求实验者掌握以下要点:要迅速而直接插入心脏,否则,心脏将从针尖 处滑脱;如第一次没刺准,将针头抽出重刺,不要在心脏周围乱探,以免损伤心、肺 要缓慢而稳定的抽吸,否则,太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留动物生命时 也可麻醉后切开动物胸部,将注射器直接刺入心脏抽吸血液。 6.大血管取血大、小鼠还可从颈动、静脉、股动、静脉和腋下动、静脉取血
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 26 2．眼眶后静脉丛取血 当需中等量的血液，而又需避免动物死亡时采用此法。 用左手固定鼠，尽量捏紧头部皮肤，使头固定，并轻轻向下压迫颈部两侧，引起头部 静脉血液回流困难，使眼球充分外突（使眼眶后静脉丛充血），右手持毛细玻璃管， 沿内眦眼眶后壁向喉头方向旋转刺入（图 3-6-2）。刺入深度小鼠 2~3mm，大鼠 4~5mm。 当感到有阻力时再稍后退，保持水平位，稍加吸引，由于血压的关系，血液即流入玻 璃管中。得到所需的血量后，拔出毛细管。若手法恰当，小鼠约可采血 0.2~0.3ml， 大鼠约可采血 0.4~0.6ml。 图 3-6-2 鼠眼眶取血法 3．断头取血 当需要较大量的血液，而又不需继续保存动物生命时采用此法。 左手捉持动物，使其头略向下倾，右手持剪刀猛力剪掉鼠头，让血液滴入盛器。小鼠 可采血 0.8~1.0ml，大鼠可采用 5~8ml。 4．眶动脉和眶静脉取血 此法既能采取较大量的血液，又可避免断头取血法中 因组织液的混入导致溶血的现象，现常取代断头取血法。先使动物眼球突出充血后， 以弯头眼科镊迅速钳取眼球，并将鼠倒置，头向下，眼眶内很快流出血液，让血液滴 入盛器，直至不流为止。此法由于取血过程中动物未死，心脏不断在跳动，因此取血 量比断头法多，一般可取鼠体重 4~5％的血液量，是一种较好的取血方法。 5．心脏取血 动物仰卧固定在固定板上，剪去心前区部位的被毛，用碘酒酒精 消毒皮肤。在左侧第 3~4 肋间，用左手食指摸到心搏处，右手取连有 4~5 号针头的注 射器，选择心搏最强处穿刺，当针刺入心脏时，血液由于心脏跳动的力量自动进入注 射器。此法要求实验者掌握以下要点：要迅速而直接插入心脏，否则，心脏将从针尖 处滑脱；如第一次没刺准，将针头抽出重刺，不要在心脏周围乱探，以免损伤心、肺； 要缓慢而稳定的抽吸，否则，太多的真空反而使心脏塌陷。若不需保留动物生命时， 也可麻醉后切开动物胸部，将注射器直接刺入心脏抽吸血液。 6．大血管取血 大、小鼠还可从颈动、静脉、股动、静脉和腋下动、静脉取血