功能学科实验教程 提抓尾巴时,因尾部皮肤容易被剥脱,故抓取时以抓捏颈背部皮肤为宜。由于大鼠比 小鼠牙尖性猛,不易用袭击方式抓取,以防大鼠在惊恐或激怒时咬伤手指,提拿时最 好戴上防护手套,轻轻抓住尾巴后提起,置于试验台上,固定方法随操作目的而定 如需尾静脉取血或注射,可将大鼠放入固定盒内或用小黑布口袋装大鼠,使其只露尾 部:如要腹腔注射或肌肉注射或灌胃,可用右手提住鼠尾,将鼠放在鼠爪能抓牢的物 体表面,如铁丝笼子,稍向后拉鼠尾、鼠身被拉长,用左手手心贴住大鼠背部(见图 3-3-3),然后迅速用食指(注意食指弯曲,用外侧)和拇指捏住后颈部皮肤(以防动 物转过头来咬伤操作者的手指),同时其余三指和大鱼际捏住背部皮肤,尽可能多地 捏住皮肤,即可将大鼠固定在左手中,右手可进行其他操作;如需长时间固定操作, 可将大鼠四肢固定在木板上,用一根棉绳拉住两只门齿固定在头端木板边缘的钉子 上 图3-3-3大鼠捉拿方法 、蛙类的抓取固定方法 蛙类抓取方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定,以中指、无名指、小指压住其 左腹侧和后肢,拇指和食指分别压住左、右前肢,右手进行操作。在抓取蟾蜍时,应 注意勿挤压其两侧耳部突起之毒腺,以免毒液喷出射进眼中。实验如需长时间观察、 可破坏其脑脊髓〔观察神经系统反应时不应破坏脑脊髓)或麻醉后用大头针固定在蛙 板上,依据实验需要采取俯卧位或仰卧位固定 四、豚鼠的抓取固定方法 豚鼠较为胆小易惊,不宜强烈刺激,所以在抓取时必须稳、准和迅速。抓取幼小 豚鼠时,用两手捧起来,成熟动物则用右手大把抓起来,用手固定。方法是先用手掌
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 17 提抓尾巴时，因尾部皮肤容易被剥脱，故抓取时以抓捏颈背部皮肤为宜。由于大鼠比 小鼠牙尖性猛，不易用袭击方式抓取，以防大鼠在惊恐或激怒时咬伤手指，提拿时最 好戴上防护手套，轻轻抓住尾巴后提起，置于试验台上，固定方法随操作目的而定。 如需尾静脉取血或注射，可将大鼠放入固定盒内或用小黑布口袋装大鼠，使其只露尾 部；如要腹腔注射或肌肉注射或灌胃，可用右手提住鼠尾，将鼠放在鼠爪能抓牢的物 体表面，如铁丝笼子，稍向后拉鼠尾、鼠身被拉长，用左手手心贴住大鼠背部（见图 3-3-3），然后迅速用食指（注意食指弯曲，用外侧）和拇指捏住后颈部皮肤（以防动 物转过头来咬伤操作者的手指），同时其余三指和大鱼际捏住背部皮肤，尽可能多地 捏住皮肤，即可将大鼠固定在左手中，右手可进行其他操作；如需长时间固定操作， 可将大鼠四肢固定在木板上，用一根棉绳拉住两只门齿固定在头端木板边缘的钉子 上。 图 3-3-3 大鼠捉拿方法 三、蛙类的抓取固定方法 蛙类抓取方法宜用左手将动物背部贴紧手掌固定，以中指、无名指、小指压住其 左腹侧和后肢，拇指和食指分别压住左、右前肢，右手进行操作。在抓取蟾蜍时，应 注意勿挤压其两侧耳部突起之毒腺，以免毒液喷出射进眼中。实验如需长时间观察、 可破坏其脑脊髓（观察神经系统反应时不应破坏脑脊髓）或麻醉后用大头针固定在蛙 板上，依据实验需要采取俯卧位或仰卧位固定。 四、豚鼠的抓取固定方法 豚鼠较为胆小易惊，不宜强烈刺激，所以在抓取时必须稳、准和迅速。抓取幼小 豚鼠时，用两手捧起来，成熟动物则用右手大把抓起来，用手固定。方法是先用手掌
功能学科实验教程 迅速扣住鼠背,抓住其肩胛上方,以母指和食指环握颈部,另一只手托住臀部(见图 3-3-4)。也可用固定器固定豚鼠或将豚鼠四肢固定在木板上 图3-3-4豚鼠抓取固定方法 五、家兔的抓取固定方法 家兔比较驯服,不会咬人,但脚爪较尖,应避免被其抓伤。进行皮下、腹腔、肌 肉注射或测肛温时,只须将家兔抓牢或按住即可。抓兔的方法是用右手把两耳轻轻地 拿在手心,抓住颈后部的皮厚处,提取兔,然后用左 手托住臀部,使兔的体重大部分落在左手上(见图 3-3-5)。不能单提两耳,因为兔耳并不能承担全身重 量,易造成疼痛而引起挣扎。单提两耳,捉拿四肢 提抓腰部和背部都是不正确的抓法 当只对兔的头部进行操作时,如耳静脉注射、采 血等,可用兔固定器(盒)固定头部,对兔进行测量 血压,呼吸及手术时,可将兔固定在兔手术台(解剖 架)上,四肢用棉绳固定在手术台两侧,另用一根棉 图3-3-5家兔捉拿方法绳拴住兔的两只门牙,另一端固定在实验台的铁柱上 即可。 六、狗的抓取固定方法 因狗性凶悍,能咬伤人,因此进行实验时第一步就是要绑住狗嘴。驯服的狗绑嘴
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 18 迅速扣住鼠背，抓住其肩胛上方，以母指和食指环握颈部，另一只手托住臀部（见图 3-3-4）。也可用固定器固定豚鼠或将豚鼠四肢固定在木板上。 图 3-3-4 豚鼠抓取固定方法 五、家兔的抓取固定方法 家兔比较驯服，不会咬人，但脚爪较尖，应避免被其抓伤。进行皮下、腹腔、肌 肉注射或测肛温时，只须将家兔抓牢或按住即可。抓兔的方法是用右手把两耳轻轻地 拿在手心，抓住颈后部的皮厚处，提取兔，然后用左 手托住臀部，使兔的体重大部分落在左手上（见图 3-3-5）。不能单提两耳，因为兔耳并不能承担全身重 量，易造成疼痛而引起挣扎。单提两耳，捉拿四肢， 提抓腰部和背部都是不正确的抓法。 当只对兔的头部进行操作时，如耳静脉注射、采 血等，可用兔固定器（盒）固定头部，对兔进行测量 血压，呼吸及手术时，可将兔固定在兔手术台（解剖 架）上，四肢用棉绳固定在手术台两侧，另用一根棉 绳拴住兔的两只门牙，另一端固定在实验台的铁柱上 即可。 六、狗的抓取固定方法 因狗性凶悍，能咬伤人，因此进行实验时第一步就是要绑住狗嘴。驯服的狗绑嘴 图 3-3-5 家兔捉拿方法
功能学科实验教程 时可从侧面靠近轻轻抚摸其颈背部皮毛,然后迅速用布带缚住其嘴,用粗棉带从下颌 绕到上颌打一结,然后绕下颌再打一结,最后将棉带索引到头后,在颈顶上打第三结 (见图3-3-6),捆绑松紧要合适,麻醉后应立即解绑,尤其用乙醚麻醉时,以免由于 鼻腔粘液阻塞而造成窒息。未经驯服用于急性实验的狗,可用特制的狗头钳夹住其颈 部,注意不要夹伤嘴和其它部位,麻醉后移去狗头钳,再固定于实验台上。狗固定时 先固定头部,再固定四肢。固定狗头需用一特制的狗头固定器。四肢固定方法与家兔 相同。 (2 图3-3-6狗嘴捆绑法 第四节实验动物的麻醉方法 动物麻醉分全身麻醉和局部麻醉。 、局部麻醉 亦称局部浸润麻醉。局部麻醉一般采用1%普鲁卡因溶液作为麻醉药。操作方法 是:将动物固定,局部手术野去毛,用左手拇指及中指将动物的局部皮肤提起使成 皱褶,并用食指按压皱褶的一端,使成三角体,增大皮下空隙,以利针刺。右手持装 有麻醉药品的注射器,自三角体中点刺入皮下(有突破感,再前进时无阻力感),并 将针头平行地全部扎入,当确信针头在皮下时即可松开皱褶,注药前回抽针栓,确认 无回血,再注入药液,边注药边向后退移针头,同时注意向两侧注药,直至整个手术 切口部位完全被麻醉药浸润为止,拔出针头,用手轻轻揉捏注射部位皮肤,以使药液 均匀弥散。如手术切口长,则在手术切口线的中点进针,在针头未退出前,将针180 度反转,向反方向刺入手术切口的另一终点,按上述方法再继续推药。注射完后1分 钟左右即可手术
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 19 时可从侧面靠近轻轻抚摸其颈背部皮毛，然后迅速用布带缚住其嘴，用粗棉带从下颌 绕到上颌打一结，然后绕下颌再打一结，最后将棉带索引到头后，在颈顶上打第三结 （见图 3-3-6），捆绑松紧要合适，麻醉后应立即解绑，尤其用乙醚麻醉时，以免由于 鼻腔粘液阻塞而造成窒息。未经驯服用于急性实验的狗，可用特制的狗头钳夹住其颈 部，注意不要夹伤嘴和其它部位，麻醉后移去狗头钳，再固定于实验台上。狗固定时 先固定头部，再固定四肢。固定狗头需用一特制的狗头固定器。四肢固定方法与家兔 相同。 第四节 实验动物的麻醉方法 动物麻醉分全身麻醉和局部麻醉。 一、局部麻醉 亦称局部浸润麻醉。局部麻醉一般采用 1％普鲁卡因溶液作为麻醉药。操作方法 是：将动物固定，局部手术野去毛，用左手拇指及中指将动物的局部皮肤提起使成一 皱褶，并用食指按压皱褶的一端，使成三角体，增大皮下空隙，以利针刺。右手持装 有麻醉药品的注射器，自三角体中点刺入皮下（有突破感，再前进时无阻力感），并 将针头平行地全部扎入，当确信针头在皮下时即可松开皱褶，注药前回抽针栓，确认 无回血，再注入药液，边注药边向后退移针头，同时注意向两侧注药，直至整个手术 切口部位完全被麻醉药浸润为止，拔出针头，用手轻轻揉捏注射部位皮肤，以使药液 均匀弥散。如手术切口长，则在手术切口线的中点进针，在针头未退出前，将针 180 度反转，向反方向刺入手术切口的另一终点，按上述方法再继续推药。注射完后 1 分 钟左右即可手术。 图 3-3-6 狗嘴捆绑法
功能学科实验教程 、全身麻醉 全身麻醉的方法有乙醚吸入麻醉、腹腔注射麻醉和静脉注射麻醉等(具体方法参 见给药方法)。 乙醚吸入麻醉乙醚为无色透明液体,极易挥发,挥发的气体有特殊的刺激 味,且易燃易爆。乙醚是最常用的吸入麻醉剂,可用于多种动物的麻醉。给小动物麻 醉时,可将蘸湿乙醚的棉花和小动物一起放入锺罩内,并密切观察动物的反应,如呼 吸频率变化和活动情况,当动物瘫软时,说明麻醉已发生效应,可移开锺罩和棉花。 注意不可吸入乙醚过量,否则会引起动物死亡。给大动物如家兔实施麻醉时,可将蘸 湿乙醚的棉花放在一大烧杯中,将家兔头部固定,将烧杯套在家兔口鼻部,使其吸入 杯中乙醚气体,同时检查家兔角膜反射和四肢张力,一旦发生角膜反射消失,四肢张 力减弱或消失,即告麻醉成功,可移开烧杯。同样注意不可麻醉过深。 乙醚麻醉时需注意,因乙醚对呼吸道粘膜有刺激作用,可使其产生大量分泌物 影响肺通气 2.注射麻醉可通过腹腔或静脉注入麻醉药实施麻醉。用于麻醉的药品种类也 有多种。具体药物,给药途径和剂量见表3-4-1。 表3-4-1常用非挥发性麻醉药的用法及剂量 药物 动物 给药途径 剂量(mgkg)作用时间 静脉 戊巴比妥钠 狗、兔 1/5量,可维持 腹腔 40-50 ih以上,麻醉 pentobarbital) 强,易抑制呼 大、小白鼠 腹腔 40-50 狗、兔 静脉 80~-100 硫喷妥钠 15~30min,麻 (Sodium 大白鼠 腹腔 醉力强,宜缓 pentothal) 慢注射 小白鼠 腹腔 15~20 氯醛糖 静脉 80~100 3~4h,诱导期 ( Chloralose 大白鼠 腹腔 不明显 乌拉坦 2~4h,毒性 (Urethane 静脉 750~1000 小,主要适用 (又称氨基甲酸大、小白鼠 皮下或肌肉 800-1000 于小动物的麻 乙酯) 豚鼠 腹腔 l000-1400 淋巴囊注射 20~25% 0.Iml/100m
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 20 二、全身麻醉 全身麻醉的方法有乙醚吸入麻醉、腹腔注射麻醉和静脉注射麻醉等（具体方法参 见给药方法）。 1．乙醚吸入麻醉 乙醚为无色透明液体，极易挥发，挥发的气体有特殊的刺激 味，且易燃易爆。乙醚是最常用的吸入麻醉剂，可用于多种动物的麻醉。给小动物麻 醉时，可将蘸湿乙醚的棉花和小动物一起放入锺罩内，并密切观察动物的反应，如呼 吸频率变化和活动情况，当动物瘫软时，说明麻醉已发生效应，可移开锺罩和棉花。 注意不可吸入乙醚过量，否则会引起动物死亡。给大动物如家兔实施麻醉时，可将蘸 湿乙醚的棉花放在一大烧杯中，将家兔头部固定，将烧杯套在家兔口鼻部，使其吸入 杯中乙醚气体，同时检查家兔角膜反射和四肢张力，一旦发生角膜反射消失，四肢张 力减弱或消失，即告麻醉成功，可移开烧杯。同样注意不可麻醉过深。 乙醚麻醉时需注意，因乙醚对呼吸道粘膜有刺激作用，可使其产生大量分泌物， 影响肺通气。 2．注射麻醉 可通过腹腔或静脉注入麻醉药实施麻醉。用于麻醉的药品种类也 有多种。具体药物，给药途径和剂量见表 3-4-1。 表 3-4-1 常用非挥发性麻醉药的用法及剂量 药物 动物 给药途径 剂量（mg/kg） 作用时间 静脉 30 狗、兔 腹腔 40~50 戊巴比妥钠 （Sodium pentobarbital） 大、小白鼠 腹腔 40~50 2~4h，中途加 1/5 量，可维持 1h 以上，麻醉 强，易抑制呼 吸 狗、兔 静脉 80~100 大白鼠 腹腔 40 硫喷妥钠 （Sodium pentothal） 小白鼠 腹腔 15~20 15~30min，麻 醉力强，宜缓 慢注射 氯醛糖 兔 静脉 80~100 （Chloralose） 大白鼠 腹腔 50 3～4h，诱导期 不明显 兔 静脉 750~1000 大、小白鼠 皮下或肌肉 800~1000 豚鼠 腹腔 1000~1400 乌拉坦 （Urethane） （又称氨基甲酸 乙酯） 蛙 淋巴囊注射 20~25％ 0.1ml/100mg 2～4h，毒性 小，主要适用 于小动物的麻 醉
功能学科实验教程 淋巴囊注射 10% 1ml/100mg 氯醛糖乌拉坦生 猫 腹腔 5~6小时。对 理盐水混合液 氯醛糖65神经反射及心 (氯1%乌7%) 乌拉坦40血管的影响较 兔 腹腔,静脉 第五节实验动物常用手术方法 实验动物的被毛去除方法 拔毛法此法简单实用,在各种动物作后肢皮下静脉注射或取血,特别是家 兔耳缘静脉注射或采血时常用。将动物固定后,用拇指和食指将所需部位的被毛拔去 即可。若涂上一层凡士林,可更清楚地显示血管。 2.剪毛法是急性实验中最常用的方法。将动物固定后,先将剪毛部位用水湿 润,将局部皮肤崩紧,用弯头手术剪紧贴动物皮肤依次将所需部位的被毛剪去。可先 粗略剪去较长的被毛,然后再仔细剪去毛桩。千万注意不能用手提着皮毛剪,否则易 剪破皮肤,影响下一步的实验。为避免剪下的被毛四处飞扬,应将剪下的被毛放入盛 有水的烧杯内。 3.剃毛法大动物做慢性手术时常采用。先用刷子蘸温肥皂水将需剃毛部位的 被毛充分浸润透,然后用剃毛刀顺被毛方向进行剃毛。若采用电动剃刀,则逆被毛方 向剃毛。 4.脱毛剂法此种方法常用于作大动物无菌手术,局部皮肤刺激性试验,观察 动物局部血液循环或其他各种病理变化。常用的脱毛化学药品有:硫化钠、硫化碱、 硫化钠(Na2S)、硫化钙(CaS)、硫化锶(SrS)、硫化钡(BaS)、三硫化二砷(AsS3) 等 常用脱毛剂配制处方: (1)硫化钠3份、肥皂粉1份,淀粉7份,加水混合,调成糊状软膏。 (2)硫化钠8g,淀粉g,糖4g,甘油5g,硼砂1g,水75g,共100g,调成稀 糊状。 (3)硫化钠8g溶于100ml水内,配成8%硫化钠水溶液 (4)硫化碱10g,生石灰15g,加水至100m1,溶解后即可用。 各种脱毛剂用法:将脱毛部位的被毛先用剪刀剪短,以节省脱毛剂用量。用棉球 或纱布块蘸取脱毛剂在脱毛部位涂成薄层,经2~3分钟后,用温水洗涤去该部位脱下
功 能 学 科 实 验 教 程 ——————————————————— ——————————————————— 21 蟾蜍 淋巴囊注射 10％ 1ml/100mg 氯醛糖乌拉坦生 猫 腹腔 理盐水混合液 (氯 1%,乌 7%) 兔 腹腔，静脉 氯醛糖 65 乌拉坦 450 5～6 小时。对 神经反射及心 血管的影响较 小 第五节 实验动物常用手术方法 一、实验动物的被毛去除方法 1．拔毛法 此法简单实用，在各种动物作后肢皮下静脉注射或取血，特别是家 兔耳缘静脉注射或采血时常用。将动物固定后，用拇指和食指将所需部位的被毛拔去 即可。若涂上一层凡士林，可更清楚地显示血管。 2．剪毛法 是急性实验中最常用的方法。将动物固定后，先将剪毛部位用水湿 润，将局部皮肤崩紧，用弯头手术剪紧贴动物皮肤依次将所需部位的被毛剪去。可先 粗略剪去较长的被毛，然后再仔细剪去毛桩。千万注意不能用手提着皮毛剪，否则易 剪破皮肤，影响下一步的实验。为避免剪下的被毛四处飞扬，应将剪下的被毛放入盛 有水的烧杯内。 3．剃毛法 大动物做慢性手术时常采用。先用刷子蘸温肥皂水将需剃毛部位的 被毛充分浸润透，然后用剃毛刀顺被毛方向进行剃毛。若采用电动剃刀，则逆被毛方 向剃毛。 4．脱毛剂法 此种方法常用于作大动物无菌手术，局部皮肤刺激性试验，观察 动物局部血液循环或其他各种病理变化。常用的脱毛化学药品有：硫化钠、硫化碱、 硫化钠（Na2S）、硫化钙（CaS）、硫化锶（SrS）、硫化钡（BaS）、三硫化二砷（As2S3） 等。 常用脱毛剂配制处方： （1）硫化钠 3 份、肥皂粉 1 份，淀粉 7 份，加水混合，调成糊状软膏。 （2）硫化钠 8g，淀粉 7g，糖 4g，甘油 5g，硼砂 1g，水 75g，共 100g，调成稀 糊状。 （3）硫化钠 8g 溶于 100m1 水内，配成 8％硫化钠水溶液。 （4）硫化碱 10g，生石灰 15g，加水至 100m1，溶解后即可用。 各种脱毛剂用法：将脱毛部位的被毛先用剪刀剪短，以节省脱毛剂用量。用棉球 或纱布块蘸取脱毛剂在脱毛部位涂成薄层，经 2~3 分钟后，用温水洗涤去该部位脱下