实验一实验动物给药途径和方法 一、动物的编号、捉套和固定。 1、动物的编号犬、兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。白色家兔和小动物可用35% 的黄色苦味酸溶液涂于毛上标号。如编号110号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后 肢的左、中、右部共九个区域，从右到左1-9号，第10号不涂黄色（图1-1）如加上其它颜色 的染料还可进行1-100号和1-1000号等更多编号。 图1-1小白鼠背部编号 图1-2小白鼠双手捉持法 (引自：医学技能学实验教程.白波2004) (引自：医学技能学实验教程.白波2004) 2、动物的捉拿和固定 ①小鼠：右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食 指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。另 抓法是只用手 用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。前一种 方法易学，后一种方法便于快速捉拿。（见图1-2,1-3） 图13小白鼠双手捉持法 (引自：医学技能学实验教程白波2004) ②大鼠：以右手或持夹子夹住尾巴，左手戴上防护手套固定头部防止被咬，应避免用力 过大造成大鼠室总死亡。根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠 手术板上。 ③豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与右手拇指与食指之间，轻轻扣 住颈胸部，右手抓住两后肢（对体重较大的豚鼠则可托起其臀部），使腹部向上 ④兔：用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。以另一手托起兔的臀部， 将兔仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。另一人 将绳子用活结捆绑免的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定， 也可用棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用（图14）
实验一 实验动物给药途径和方法 一、动物的编号、捉拿和固定。 1、动物的编号 犬、兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。白色家兔和小动物可用 3-5% 的黄色苦味酸溶液涂于毛上标号。如编号 1-10 号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后 肢的左、中、右部共九个区域，从右到左 1-9 号，第 10 号不涂黄色(图 1-1)如加上其它颜色 的染料还可进行 1-100 号和 1-1000 号等更多编号。 图 1-1 小白鼠背部编号 图 1-2 小白鼠双手捉持法 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004） （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004） 2、动物的捉拿和固定 ①小鼠：右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食 指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。另一抓法是只用手， 用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。前一种 方法易学，后一种方法便于快速捉拿。（见图 1-2，1-3） 图 1-3 小白鼠双手捉持法 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004） ②大鼠：以右手或持夹子夹住尾巴，左手戴上防护手套固定头部防止被咬，应避免用力 过大造成大鼠窒息死亡。根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠 手术板上。 ③豚鼠：以右手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与右手拇指与食指之间，轻轻扣 住颈胸部，右手抓住两后肢(对体重较大的豚鼠则可托起其臀部)，使腹部向上。 ④兔：用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。以另一手托起兔的臀部。 将兔仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。另一人 将绳子用活结捆绑兔的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定， 也可用棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用(图 1-4)
图14家兔捉持法 (引自：医学技能学实验教程.白波2004) 二、实验动物的去毛 动物去毛是手术野的皮肤准备之一。原则是去毛范围应大于手术野，不破坏皮肤的完整 性。具体方法有： 1、剪毛法常用于兔犬去毛。操作时用剪刀紧贴皮肤依次剪毛，切忌提起皮肤，否则将剪 破皮肤。剪下的毛应放入盛有少量水的杯中，并可用湿纱布擦去已剪断的毛。 2、拨毛法：一般用于兔和犬的静脉输液部位。拨毛除使视野清晰外，还能刺激局部血管扩 3、单制手法，讲行动物的梅性实验时用。 4、脱毛法：用于动物的无菌手术，一般先将手术野的毛剪短，用脱毛液在局部涂一层注意 手不要直接接触脱毛液)，待2-3mi后用清水洗去脱落的毛，再用纱布擦干后涂一层凡士林。 在此介绍两种脱毛液配方。配方1：硫化钠3，肥皂粉1，淀粉7，加水调成糊状。配方2： 8%的硫化钠水溶液。 三、实验动物的药方法 在动物实验中 为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动 物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情 况确定。 (一)皮下注射 注射时以左手拇指和合指提起皮肤，将连有5(12)号针头的注射器划入皮下。皮下注 射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部：大白鼠可在侧下腹部。免 在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。 (二)皮内注射 皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧， 在两指之间，用结核菌素注射器连4(12)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起 并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。 (三)肌肉注射 肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌 肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手 抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有5(12)针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将 药液注入 (四)腹腔注射 用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右） 下腹部刺入皮下，使针头向前推0.51.0cm,再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入 药液（图1-5），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为
图 1-4 家兔捉持法 （引自：医学技能学实验教程. 白波. 2004） 二、实验动物的去毛 动物去毛是手术野的皮肤准备之一。原则是去毛范围应大于手术野，不破坏皮肤的完整 性。具体方法有： 1、剪毛法 常用于兔犬去毛。操作时用剪刀紧贴皮肤依次剪毛，切忌提起皮肤，否则将剪 破皮肤。剪下的毛应放入盛有少量水的杯中，并可用湿纱布擦去已剪断的毛。 2、拨毛法：一般用于兔和犬的静脉输液部位。拨毛除使视野清晰外，还能刺激局部血管扩 张。 3、剃毛法：进行动物的慢性实验时用。 4、脱毛法：用于动物的无菌手术，一般先将手术野的毛剪短，用脱毛液在局部涂一层(注意 手不要直接接触脱毛液)，待 2-3min 后用清水洗去脱落的毛，再用纱布擦干后涂一层凡士林。 在此介绍两种脱毛液配方。配方 1：硫化钠 3，肥皂粉 1，淀粉 7，加水调成糊状。配方 2： 8%的硫化钠水溶液。 三、实验动物的药方法 在动物实验中，为了观察药物对机能功能、代谢及形态引起的变化，常需将药物注入动 物体内。给药的途径和方法是多种多样的，可根据实验目的、实验动物种类和药物剂型等情 况确定。 （一）皮下注射 注射时以左手拇指和食指提起皮肤，将连有 5（1/2）号针头的注射器刺入皮下。皮下注 射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后大腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。兔 在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。 （二）皮内注射 皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧， 在两指之间，用结核菌素注射器连 4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起 并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。 （三）肌肉注射 肌肉注射应选肌肉发达，无大血管通过的部位，一般多选臀部。注射时垂直迅速刺入肌 肉，回抽针栓如无回血，即可进行注射。给小白鼠、大白鼠等小动物作肌肉注射时，用左手 抓住鼠两耳和头部皮肤，右手取连有 5（1/2）针头的注射器，将针头刺入大腿外侧肌肉，将 药液注入。 （四）腹腔注射 用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右） 下腹部刺入皮下，使针头向前推 0.5-1.0cm，再以 45 度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入 药液（图 1-5），为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为
家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开lcm处。 图15小白鼠腹腔注射方法 图1-6家兔耳缘静脉注射方法 (五)静脉注射 1、兔：兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定 故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使 静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面 右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指 和中指，将药液注入（图1-6），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。 2、小白鼠和大白鼠： 一般采用星静注射。鼠民静脉右二相左右两侧及背侧一根 左右两侧尾静脉比较容易周定，多采用， 背侧一根也可采用，但位置容易 定。操作时先将 动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45-50C的温水浸润半分钟或用酒精 擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用 中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连412)号细针头， 使针头与静脉平行（小30℃），从尾下四分之一处（约距昆尖2.3m)处讲针，此外皮 易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射完毕后托 尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注 射（图1-7）。 e-.-85n- 3m2 英 图1-7小鼠尾静脉注射方法 3、狗.狗静脉注射多洗前肢内侧皮下美静脉（图1-8）或后肢小隐静脉（图19）注 射。注射前由助手将动物侧卧，剪去注 部位的被毛，用胶皮带扎紧（或用手抓紧）静脉远 端，使血管充盈，从静脉的远端将注射针头平行刺入血管，待有回血后，松开绑带（或两手）， 缓缓注入药
家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开 1cm 处。 图 1-5 小白鼠腹腔注射方法 图 1-6 家兔耳缘静脉注射方法 （五）静脉注射 1、兔：兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动物，耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定， 故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使 静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面， 右手持注射器连 6 号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指 和中指，将药液注入（图 1-6），然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。 2、小白鼠和大白鼠：一般采用尾静脉注射，鼠尾静脉有三根，左右两侧及背侧各一根， 左右两侧尾静脉比较容易固定，多采用，背侧一根也可采用，但位置容易固定。操作时先将 动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用 45-50℃的温水浸润半分钟或用酒精 擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用 中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连 4(1/2)号细针头， 使针头与静脉平行（小于 30℃），从尾下四分之一处（约距尾尖 2-3cm）处进针，此处皮薄 易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射完毕后把 尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注 射（图 1-7）。 图 1-7 小鼠尾静脉注射方法 3、狗：狗静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉（图 1-8）或后肢小隐静脉（图 1-9）注 射。注射前由助手将动物侧卧，剪去注射部位的被毛，用胶皮带扎紧（或用手抓紧）静脉近 端，使血管充盈，从静脉的远端将注射针头平行刺入血管，待有回血后，松开绑带（或两手）， 缓缓注入药
图8狗曾防头静脉注时 图19狗后肢小隐静脉注射 4、蛙（或蟾蜍）：将蛙或蟾蜍脑脊髓破坏后，仰卧固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹 肌，可见到腹静脉贴腹壁肌肉下行，将注射针头沿血管平行方向刺入即可（图11O。 (六)淋巴囊注射 蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴 囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经 大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋 巴囊给药，方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入胸淋巴囊内注入药液】 一次是大注舟 量为1毫升。蛙全身分布为咽、胸、背、腹侧、腹、大腿和脚等七个淋巴囊（图11）。 0 图1-10蛙腹壁静静注射 几种常用的动物不同给药途径的注射量可参考表1~1。 表1-1几种动物不同给药途径的常用注射量(ml) 注射途径 小鼠 大鼠 豚鼠 兔 腹腔 0.2-1.0 1-3 2-5 5-10 5-15 肌 肉 0.1-0.2 0.2-0.5 0.2-0.5 0.5-1.0 2-5 静 0.2-0.5 1-2 1-5 3-10 5-15 0.1-0.5 0.5-1.0 0.5-2 1.0-3.0 3-10
图 1-8 狗前肢头静脉注射 图 1-9 狗后肢小隐静脉注射 4、蛙（或蟾蜍）：将蛙或蟾蜍脑脊髓破坏后，仰卧固定于蛙板上，沿腹中线稍左剪开腹 肌，可见到腹静脉贴着腹壁肌肉下行，将注射针头沿血管平行方向刺入即可（图 1-10）。 （六）淋巴囊注射 蛙类常采用此法，因其皮下有数个淋巴囊，注入药物甚易吸收。腹部淋巴囊和头背淋巴 囊常作为蛙类给药途径。一般多选用腹部淋巴囊给药。注射时将针头从蛙大腿上端刺入，经 大腿肌层入腹壁肌层，再进入腹壁皮下，即进入淋巴囊，然后注入药液。有时也可采用胸淋 巴囊给药。方法是将针头刺入口腔，使穿过下颌肌层入胸淋巴囊内注入药液，一次最大注射 量为 1 毫升。蛙全身分布为咽、胸、背、腹侧、腹、大腿和脚等七个淋巴囊（图 1-11）。 图 1-10 蛙腹壁静静注射 几种常用的动物不同给药途径的注射量可参考表 1-1。 表 1-1 几种动物不同给药途径的常用注射量（ml） 注射途径 小鼠 大鼠 豚鼠 兔 狗 腹 腔 0.2-1.0 1-3 2-5 5-10 5-15 肌 肉 0.1-0.2 0.2-0.5 0.2-0.5 0.5-1.0 2-5 静 脉 0.2-0.5 1-2 1-5 3-10 5-15 皮 下 0.1-0.5 0.5-1.0 0.5-2 1.0-3.0 3-10
港巴 侧淋巴 大腿淋巴震 脚淋巴囊 脚淋巴瘦 蛙全身淋巴囊分布 (七)经口给药 在急性试验中，经口给药多用灌胃法，此法剂量准确，适用于小白鼠、大白鼠、家兔等 动物 1、小鼠、大鼠（或豚鼠）用输血针头或小号腰穿针头，将其尖端斜面磨剂，用焊锡在 针尖周围焊一圆头，注意勿堵塞针孔，即成灌胃针：亦可用烧成圆头的硬质玻璃毛细管或特 制的塑料毛细秋，作为导管。灌胃时将针按在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部 专肤将动物固定，右毛持注射器，将灌胃针插入动物口中，沿后壁徐徐插入食消。动物耐 固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应立即停止进针或将针拔 出，以兔损伤或穿破食道以及误入气管。 一般当灌胃针插入小鼠34cm,大鼠或豚鼠46cm后可将药物注入。常用的灌胃量小 鼠为0.2-1mL,大鼠1-4mL,豚鼠为1-5mL。 2、狗、兔、猎、猴灌胃时，先将动物周定，再将特制的扩口器放入动物口中，扩口翠 之宽度可视动物口腔大小而定，如狗的扩口器可用木料制成长方形，长约1015 1粗细 应适合嘴，约2一3m中间粘一小孔。孔的直途为510m。灌胃时将扩口器放于上述动 物上下门牙之后，并用绳将它固定于嘴部，将带有弹性的橡皮导管（如导尿管），经扩口器 上的小圆孔插入，沿咽后壁而进入食道，此时应检查导管是否正确插入食道，可将导管外口 置于一盛水的烧杯中，如不发生气泡，即认为此导管是在食道中，未误入气管，即可将药液 灌入（图1-12）
图 1-11 蛙全身淋巴囊分布 （七）经口给药 在急性试验中，经口给药多用灌胃法，此法剂量准确，适用于小白鼠、大白鼠、家兔等 动物。 1、小鼠、大鼠（或豚鼠）用输血针头或小号腰穿针头，将其尖端斜面磨剂，用焊锡在 针尖周围焊一圆头，注意勿堵塞针孔，即成灌胃针；亦可用烧成圆头的硬质玻璃毛细管或特 制的塑料毛细秋，作为导管。灌胃时将针按在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部 皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。动物应 固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应立即停止进针或将针拔 出，以兔损伤或穿破食道以及误入气管。 一般当灌胃针插入小鼠 3-4 cm，大鼠或豚鼠 4-6 cm 后可将药物注入。常用的灌胃量小 鼠为 0.2-1 mL，大鼠 1-4 mL，豚鼠为 1-5 mL。 2、狗、兔、猫、猴 灌胃时，先将动物固定，再将特制的扩口器放入动物口中，扩口器 之宽度可视动物口腔大小而定，如狗的扩口器可用木料制成长方形，长约 10-15 cm，粗细 应适合狗嘴，约 2-3 cm，中间粘一小孔，孔的直途为 5-10 cm。灌胃时将扩口器放于上述动 物上下门牙之后，并用绳将它固定于嘴部，将带有弹性的橡皮导管（如导尿管），经扩口器 上的小圆孔插入，沿咽后壁而进入食道，此时应检查导管是否正确插入食道，可将导管外口 置于一盛水的烧杯中，如不发生气泡，即认为此导管是在食道中，未误入气管，即可将药液 灌入（图 1-12）