心脏的活动变化。 图1-7-10蛙心灌流仪器连接方法 5)同上法冲洗并换以等量任氏液,待心脏恢复正常后,加入1:10000肾上腺素2~ 3滴,观察并记录心脏的活动变化 (6)同上法冲洗并换以等量任氏液,待心脏恢复正常后,加入1:10000乙酰胆碱1~ 2滴,观察并记录心脏的活动变化 [方法评估] 检验心肌生理特性的基本方法之二,手术及操作亦较简单易于掌握 [应用意义] 为心肌生理特性验证性实验,主要用于验证或检测内环境因子对心脏活动的影响 [注意事项] 1、蛙心夹应一次夹住心尖,不宜反复多次以致损伤心脏,导致漏液。蛙心夹与换能器 簧片的连线呈一定的倾斜度,以防止溶液滴入换能器。 2、当各项实验效果明显后,应及时将插管内溶液吸出,用任氏液反复冲洗数次,待心 跳恢复正常后,再进行下一项实验。 3、各种溶液的吸管必须分开,不要混用 4、在实验过程中,蛙心插管内灌流液的液面高度应适宜,一般为1~2cm,在各项观察 项目中,液面高度应保持一致。仪器各项参数一经调好也不可变动。 5、加药后效果不明显可适量滴加并密切注意计量增加后的实验结果,出现变化应立即 更换任氏液,加药过量会导致不可挽回的后果或难以恢复的心脏停跳 每进行观察项目时,先记录一段正常对照曲线,然后再加入待试液,并记录其效应。 [思考题] 1、高K高Ca“高Na'对心脏活动有什么影响,其机理如何? 2、从心肌生理特性分析以上实验结果。 实验8鱼类心脏灌流(选修) 目的和原理 掌握鱼类离体心脏灌流方法,并通过自主性药物对心脏活动的影响,加深对鱼类心肌某 些特性的理解 离体心脏在生理盐溶液中能保持一定的节律性兴奋与收缩活动。将离体鱼心置于生理盐 溶液中,并通过导管对心脏进行灌流,再通过记录装置,便可记录与分析心脏活动规律。同 时利用这一装置,可以研究内环境渗透压、自主性药物、及其它因子等对心脏活动的影响 特别是对心肌自动节律性的影响,从而加深对心肌细胞生理特性的理解。 试剂与器材 材料:鲤 试剂: 灌流液(鱼类生理盐溶液:)NaCl:7.526g,KCl:0.417g,CaCl2:0.322g,MgCl2 0.095g, NaHCO3:0.193g,KHPO4:0.122g,葡萄糖:2.91g,蒸馏水:Ⅱ,配好后溶液的 pH值为69 2、肾上腺素,乙酰胆碱、5一羟色胺:用灌流液配制成10-5的浓度。 器材: 实验装置(如图1-7-11所示)
16 心脏的活动变化。 图 1-7-10 蛙心灌流仪器连接方法 （5）同上法冲洗并换以等量任氏液，待心脏恢复正常后，加入 1：10000 肾上腺素 2～ 3 滴，观察并记录心脏的活动变化。 （6）同上法冲洗并换以等量任氏液，待心脏恢复正常后，加入 1：10000 乙酰胆碱 1～ 2 滴，观察并记录心脏的活动变化。 [方法评估] 检验心肌生理特性的基本方法之二，手术及操作亦较简单易于掌握。 [应用意义] 为心肌生理特性验证性实验，主要用于验证或检测内环境因子对心脏活动的影响。 [注意事项] 1、蛙心夹应一次夹住心尖，不宜反复多次以致损伤心脏，导致漏液。蛙心夹与换能器 簧片的连线呈一定的倾斜度，以防止溶液滴入换能器。 2、当各项实验效果明显后，应及时将插管内溶液吸出，用任氏液反复冲洗数次，待心 跳恢复正常后，再进行下一项实验。 3、各种溶液的吸管必须分开，不要混用。 4、在实验过程中，蛙心插管内灌流液的液面高度应适宜，一般为 1～2cm，在各项观察 项目中，液面高度应保持一致。仪器各项参数一经调好也不可变动。 5、加药后效果不明显可适量滴加并密切注意计量增加后的实验结果，出现变化应立即 更换任氏液，加药过量会导致不可挽回的后果或难以恢复的心脏停跳。 6、每进行观察项目时，先记录一段正常对照曲线，然后再加入待试液，并记录其效应。 [思考题] 1、高 K +高 Ca2+高 Na+对心脏活动有什么影响，其机理如何？ 2、从心肌生理特性分析以上实验结果。 实验 8 鱼类心脏灌流（选修） [目的和原理] 掌握鱼类离体心脏灌流方法，并通过自主性药物对心脏活动的影响，加深对鱼类心肌某 些特性的理解。 离体心脏在生理盐溶液中能保持一定的节律性兴奋与收缩活动。将离体鱼心置于生理盐 溶液中，并通过导管对心脏进行灌流，再通过记录装置，便可记录与分析心脏活动规律。同 时利用这一装置，可以研究内环境渗透压、自主性药物、及其它因子等对心脏活动的影响， 特别是对心肌自动节律性的影响，从而加深对心肌细胞生理特性的理解。 [试剂与器材] 材料：鲤 试剂： 1、灌流液（鱼类生理盐溶液：）NaCl：7.526g ，KCl：0.417g，CaCl2：0.322g，MgCl2： 0.095g，NaHCO3：0.193g，KH2PO4：0.122g，葡萄糖：2.91g，蒸馏水：lL，配好后溶液的 pH 值为 6.9。 2、肾上腺素，乙酰胆碱、5 一羟色胺：用灌流液配制成 10－5 的浓度。 器材： 实验装置(如图 1-7-11 所示)
实验步骤 1、用MS-222把鱼麻醉,打开胸腔,迅速取出心脏,要保留一定长度的腹大动脉和主 静脉,放入盛有100ml灌流液的培养缸中。 2、如图1-7-11所示,从后主静脉或肝静脉插入一塑料小管(选择合适的管径),在窦房 结处结扎,从腹大动脉插入另一管,在与动脉球连接处结扎 3、按图1-7-11所示接好灌流装置。灌流速度调整为2-3ml/min。灌流液从容器中经 蠕动泵,稳流烧瓶和导管进入静脉窦,再从动脉球流出,流出的液体用量简收集,计算其速 度。用压力换能器记录心脏活动。换能器上有一根短的钨丝、其末端连着一个小塑料珠子 (4mm)。珠子紧靠心室放置,心房和心室收缩引起钨丝偏斜,经放大而显示在内应力测定记 录仪上( Dynagraph recorder) 4、在3-6s内,从注射阀门注入药物0.05-02ml,观察心脏收缩的变化。每种药物注入 后,要经过一段时间让心脏恢复正常,才能注入第二种药物 前主静剧 扎位点 后主静脉 生殖腺静脉 镇骨下静脉 肝静脉 大动脉 动脉球 心室心房静脉窦 鲤鱼心脏左侧面图 注射阀门(用以让射药物) 动泵 F力链换器 (用以监测灌注心脏的且力变化) 图1-7-11鱼心脏灌流装置图 方法评估 该方法为了解鱼类心肌某些特性的基本实验方法之一,其实验装置和手术操作都较复 杂,且较难以掌握,可用于研究性实验 应用意义 了解鱼类心肌特性的验证性实验也可用作研究各种因素(如农药、有机物污染、高氨氮 等)对鱼类等水产动物心脏功能的影响 注意事项 1、手术一定要认真仔细,以免穿透心脏难以进行灌流: 2、在灌流过程中一定注意要在恢复正常后才能加入第二种药物: 3、出现曲线变化后即刻换掉药物以免长时间作用难以恢复生理功能
17 [实验步骤] 1、 用 MS-222 把鱼麻醉，打开胸腔，迅速取出心脏，要保留一定长度的腹大动脉和主 静脉，放入盛有 100ml 灌流液的培养缸中。 2、如图 1-7-11 所示，从后主静脉或肝静脉插入一塑料小管(选择合适的管径)，在窦房 结处结扎，从腹大动脉插入另一管，在与动脉球连接处结扎。 3、按图 1-7-11 所示接好灌流装置。灌流速度调整为 2—3ml／min。灌流液从容器中经 蠕动泵，稳流烧瓶和导管进入静脉窦，再从动脉球流出，流出的液体用量简收集，计算其速 度。用压力换能器记录心脏活动。换能器上有一根短的钨丝、其末端连着一个小塑料珠子 (4mm)。珠子紧靠心室放置，心房和心室收缩引起钨丝偏斜，经放大而显示在内应力测定记 录仪上(Dynagraph recorder)。 4、在 3—6s 内，从注射阀门注入药物 0.05-0.2ml，观察心脏收缩的变化。每种药物注入 后，要经过一段时间让心脏恢复正常，才能注入第二种药物。 图 1-7-11 鱼心脏灌流装置图 [方法评估] 该方法为了解鱼类心肌某些特性的基本实验方法之一，其实验装置和手术操作都较复 杂，且较难以掌握，可用于研究性实验。 [应用意义] 了解鱼类心肌特性的验证性实验也可用作研究各种因素（如农药、有机物污染、高氨氮 等）对鱼类等水产动物心脏功能的影响。 [注意事项] 1、手术一定要认真仔细，以免穿透心脏难以进行灌流； 2、在灌流过程中一定注意要在恢复正常后才能加入第二种药物； 3、出现曲线变化后即刻换掉药物以免长时间作用难以恢复生理功能
[思考题] 1、实验中化学物质对鱼类心脏活动的影响如何:与高等脊椎动物比较有何不同 2、分析对比肾上腺素、乙酰胆碱、5-羟色胺等对心脏收缩的影响并讨论其作用机理。 实验9离体小肠平滑肌的生理特性(必修) 目的与原理 掌握离体小肠平滑肌收缩的记录方法。通过观察化学物质、温度变化对离体小肠平滑 肌收缩的影响,加深对平滑肌某些基本特性的理解 消化道平滑肌除具有与骨骼肌相同的某些特性(如兴奋性、收缩性)外,还具有自动 节律性和对某些化学物质特别敏感的特性;离体肠段还具有一定紧张性。 离体小肠平滑肌在适宜环境中仍可保持其生理功能,因此可以将小肠肠段置于模拟的 内环境中观察各种理化因子的变化对小肠平滑肌收缩活动的影响 实验对象 家兔离体肠段。 试剂和器材 木槌,平滑肌恒温浴槽,生物信息采集处理系统,计算机,球胆,氧气,滴管,烧杯, 普通剪刀,手术剪,镊子,热水,冰块,台氏液,肾上腺素(1:10,000,乙酰胆碱(l:100,000 10g/LCaCIz, NaOH(Imol/L ) HCI(1 mol/L) 实验步骤] 1、实验准备 (1)制备标本:提起家兔后肢将其倒悬,用木槌猛击头部致昏迷。立即开腹,在十二指 肠及其邻近部位剪20~30cm长的肠段,用台氏液冲洗肠段中的内容物,然后剪成数小段 (每段长约2-3cm),用棉线结扎肠段两端,置于4~6℃台氏液中备用 (2)加热恒温浴槽:将台氏液加入恒温浴槽中心管内,外部容器中裝入温水(略低于38℃) 开启电源加热,浴槽温度就会自动控制在38℃左右。 (3)连接好仪器,选择适当的参数。 (4)放置标本,连接实验装置:将肠段一端结扎线连在中心浴槽内标本固定钩上,另 端结扎线连在张力换能器上,将浴槽充气管与充满氧气的球胆相连,调节三通开关.使气泡 小而连续地通至中心浴槽.以供给标本足够的氧气。换能器的输出线与计算机输入接口相连 接。参看图1-7-12。 (5)打开计算机,在功能菜单上选择本实验的软件后,使系统进入信号采集状态。单击 实验项目→平滑肌实验,并根据注入的药物做好标记 2、观察项目 (1)自动节律收缩:在不施加刺激的情况下,观察记录其舒缩状况。注意节律、波形 幅度及紧张性(依据曲线的基线变化而定) (2)Ach的作用:用接有腰穿针头的注射器抽取:100,000Ach04ml。插入浴槽内适当 深度后注入,使其迅速发挥作用。观察曲线变化.出现明显效果后.立即更换浴槽内台氏液, 反复3次。待平滑肌收缩恢复后,再进行下一项观察。 (3)肾上腺素的作用:按上法注入1:10,000肾上腺素04ml,记录到曲线明显变化后 按上法更换台氏液。 (4)CaCl2的作用:按上法给予1:100aCl20.4ml。观察平滑肌的反应后,按前法更换台 氏液
18 [思考题] 1、实验中化学物质对鱼类心脏活动的影响如何；与高等脊椎动物比较有何不同。 2、分析对比肾上腺素、乙酰胆碱、5-羟色胺等对心脏收缩的影响并讨论其作用机理。 实验 9 离体小肠平滑肌的生理特性（必修） [目的与原理] 掌握离体小肠平滑肌收缩的记录方法。通过观察化学物质、温度变化对离体小肠平滑 肌收缩的影响，加深对平滑肌某些基本特性的理解。 消化道平滑肌除具有与骨骼肌相同的某些特性（如兴奋性、收缩性）外，还具有自动 节律性和对某些化学物质特别敏感的特性；离体肠段还具有一定紧张性。 离体小肠平滑肌在适宜环境中仍可保持其生理功能，因此可以将小肠肠段置于模拟的 内环境中观察各种理化因子的变化对小肠平滑肌收缩活动的影响。 [实验对象] 家兔离体肠段。 [试剂和器材] 木槌，平滑肌恒温浴槽，生物信息采集处理系统，计算机，球胆，氧气，滴管，烧杯， 普通剪刀，手术剪，镊子，热水，冰块，台氏液，肾上腺素(1：10 ,000)，乙酰胆碱(1：100 ,000)， 10g／LCaCl2，NaOH(1mol/L )，HCl(1 mol/L)。 [实验步骤] 1、实验准备 (1)制备标本：提起家兔后肢将其倒悬，用木槌猛击头部致昏迷。立即开腹，在十二指 肠及其邻近部位剪 20 ～ 30cm 长的肠段，用台氏液冲洗肠段中的内容物，然后剪成数小段 (每段长约 2 -3cm)，用棉线结扎肠段两端，置于 4～6℃台氏液中备用。 (2)加热恒温浴槽：将台氏液加入恒温浴槽中心管内，外部容器中装入温水(略低于 38℃)， 开启电源加热，浴槽温度就会自动控制在 38℃左右。 (3)连接好仪器，选择适当的参数。 (4)放置标本，连接实验装置：将肠段一端结扎线连在中心浴槽内标本固定钩上，另一 端结扎线连在张力换能器上，将浴槽充气管与充满氧气的球胆相连，调节三通开关．使气泡 小而连续地通至中心浴槽．以供给标本足够的氧气。换能器的输出线与计算机输入接口相连 接。参看图 1-7-12。 (5)打开计算机，在功能菜单上选择本实验的软件后，使系统进入信号采集状态。单击 实验项目→平滑肌实验，并根据注入的药物做好标记。 2、观察项目 (1)自动节律收缩：在不施加刺激的情况下，观察记录其舒缩状况。注意节律、波形、 幅度及紧张性(依据曲线的基线变化而定)。 (2)Ach 的作用：用接有腰穿针头的注射器抽取 1：100 ,000Ach 0.4 ml。插入浴槽内适当 深度后注入，使其迅速发挥作用。观察曲线变化．出现明显效果后．立即更换浴槽内台氏液， 反复 3 次。待平滑肌收缩恢复后，再进行下一项观察。 (3)肾上腺素的作用：按上法注入 1：10 ,000 肾上腺素 0.4 ml，记录到曲线明显变化后， 按上法更换台氏液。 (4)CaCl2 的作用：按上法给予 1：100CaCl20.4ml。观察平滑肌的反应后，按前法更换台 氏液
(5)温度的影响:在浴槽中加一小块台氏液制的冰块,以降低浴液温度(约至25℃左右), 观察平滑肌的反应。待冰块融化,浴槽内温度回升后,即可进行下一项而不必换液 (6)HCI的作用:将lmo/L的HC04ml加入浴槽内,观察平滑肌的反应,按前法更换 台氏液 (7)NaOH的作用:将1mol/L的NaOH0.4ml加入浴槽内,观察平滑肌的反应。 描笔(或连至机械-电换能器) 立柱机械电换能器 放水器 (内盛台氏液 (5%CO3+95%O2)灌流浴槽 灌流液预热槽 小肠平滑肌标本 小肠平滑肌标本 恒温浴槽 大烧杯 加热器 (内盛清水) 供气管 排水管 加热指示灯 电源开关 图1-7-12离体小肠平滑肌实验装置 「方法评估 上述实验可使用两套浴槽中的任一套,用玻璃浴槽简便但控温不理想。恒温浴槽控温较 好也较简便,价格较贵。 应用意义 为平滑肌生理特性验证性实验,主要应运于观察分析平滑肌生理特性自动节律性、收缩 性及其各种理化因子对它的影响 注意事项 1、注意保持浴槽内温度在38℃左右,每次更换台氏液前,要先将台氏液加热至38℃左 右再加入浴槽内 2、每项实验出现作用后,要及时更换台氏液并冲洗数次,待肠段恢复正常后再进行下 个实验。 3、滴加药液时,要有一定深度,且需计量适度,不可加药过量 [思考题 1、小肠平滑肌有哪些特性? 2、小肠平滑肌受哪些因素调节? 实验10反射中枢活动的某些基本特征及反射弧的分析(选修) 目的与原理 通过对某些脊髓反射(如脊蛙的屈肌反射)的分析,了解反射弧完整性与反射活动的关 系 掌握反射时的测定方法,通过用不同浓度的硫酸溶液刺激蛙趾引起屈肌反射,了解刺激 强度与反射时的关系。 以脊蛙的屈肌反射为指标,观察反射中枢活动的某些基本特征,并分析它们产生的机制 在中枢神经系统的参与下,机体对刺激所产生的具有适应意义的规性律性反应过程称
19 (5)温度的影响：在浴槽中加一小块台氏液制的冰块，以降低浴液温度（约至 25℃左右）， 观察平滑肌的反应。待冰块融化，浴槽内温度回升后，即可进行下一项而不必换液。 (6)HCI 的作用：将 1mol/L 的 HCl0.4 ml 加入浴槽内，观察平滑肌的反应，按前法更换 台氏液。 (7)NaOH 的作用：将 1mol／L 的 NaOH 0.4ml 加入浴槽内,观察平滑肌的反应。 图 1-7-12 离体小肠平滑肌实验装置 [方法评估] 上述实验可使用两套浴槽中的任一套，用玻璃浴槽简便但控温不理想。恒温浴槽控温较 好也较简便，价格较贵。 [应用意义] 为平滑肌生理特性验证性实验，主要应运于观察分析平滑肌生理特性自动节律性、收缩 性及其各种理化因子对它的影响。 [注意事项] 1、注意保持浴槽内温度在 38℃左右，每次更换台氏液前，要先将台氏液加热至 38℃左 右再加入浴槽内。 2、每项实验出现作用后，要及时更换台氏液并冲洗数次，待肠段恢复正常后再进行下 一个实验。 3、滴加药液时，要有一定深度，且需计量适度，不可加药过量。 [思考题] 1、小肠平滑肌有哪些特性? 2、小肠平滑肌受哪些因素调节? 实验 10 反射中枢活动的某些基本特征及反射弧的分析（选修） [目的与原理] 通过对某些脊髓反射（如脊蛙的屈肌反射）的分析，了解反射弧完整性与反射活动的关 系 掌握反射时的测定方法，通过用不同浓度的硫酸溶液刺激蛙趾引起屈肌反射，了解刺激 强度与反射时的关系。 以脊蛙的屈肌反射为指标，观察反射中枢活动的某些基本特征，并分析它们产生的机制。 在中枢神经系统的参与下，机体对刺激所产生的具有适应意义的规性律性反应过程称
为反射。将动物的高位中枢切除仅保留脊髓的动物成为脊髓动物(如脊蛙),它们产生的反 射活动为单纯的脊髓反射,由于失去高位中枢的控制反射活动较为简单,便与观察与分析反 射过程的某些特征。 反射活动的结构基础是反射弧。典型的反射弧由感受器、传入神经、神经中枢、传出 神经和效应器五个部分组成。反射弧必须保持完整性,才能引起反射,其中任何一个环节受 到破坏,反射活动就无法实现。 在反射活动中,由于神经元特别是中间神经元联系方式的不同,使反射活动表现出种种 特征。如:反射时(从刺激作用于感受器至效应器出现反应所经历的时间)的长短、反射活 动空间范围的大小、反射活动持续时间的久暂以及引起反射活动的刺激条件等等。 实验对象 蟾蜍 试剂与器材 硫酸溶液(0.1%、0.3%、0.5%、1%)、纱布。蛙类手术器械、铁架台、血管钳 把、秒表、玻璃平皿、肌夹、搪瓷杯、小滤纸(约lcm×lcm)、刺激电极两个、双输出电 刺激器一台、烧杯 实验步骤 1、实验准备 取蟾蜍一只,用粗剪刀由两侧口裂剪去上方头颅,制成脊蟾蜍。将动物俯卧位固定在蛙 板上,于右侧大腿背侧纵行剪开皮肤,在股二头肌和半膜肌之间的沟内找到坐骨神经干,在 神经干下穿一条细线备用。手术完后,用肌夹夹住动物下颌,悬挂在铁架台上。 2、实验项目 (1)反射中枢活动的某些基本特征 ①反射时的测定:在平皿内盛适量0.1%硫酸溶液,将蟾蜍一侧后肢的一个脚趾尖浸入 硫酸溶液中,同时按动秒表记录从浸入时起至后肢发生屈曲所需要的时间,并立即将该足趾 浸入搪瓷杯水中浸洗数次,然后用纱布拭干。用上述方法重复三次,注意每次浸入趾尖的深 度要一致。三次所测时间的平均值,即为此反射的反射时(两次实验间隔至少2~3min) 然后平皿中分别换以03%、05%、1%的硫酸溶液再重复上述测定,比较四种浓度硫酸所测 之反射时是否相同。 ②反射的空间范围(扩散):将一个电极放在蟾蜍后肢的足面皮肤上,先给予弱的连续 电刺激,观察发生的反应,然后依次增加刺激强度,观察每次增加强度所引起反射的空间范 围有何变化。 ③反射的持续时间(后放):在观察反射的空间范围中,还要注意观察随刺激强度的增 加,所引起反射持续的时间有何变化,并以秒表计算至刺激停止起到反射活动结束之间共持 续多少时间(后放) ④阈下刺激引起反射的条件:将两个刺激电极各连接刺激器的输出端,然后分别与蟾蜍 同一后肢相同的皮肤区域接触,用单个电刺激找出引起屈肌反射的阈值,再用略低于此阈值 的阈下刺激分别给以单个电刺激,如均不引起反应,然后把两个电极放在皮肤的同一区域, 距离不超过0.5cm,当同时给予阈下刺激时,观察可否引起反射。 另外,只放一个电极在后肢皮肤上,在给一次阈下刺激不能引起反射的情况下,换以连 续刺激并依次增加刺激频率,记录哪一频率最早引起反射,并计算该频率刺激的时间间隔(即 刺激频率的倒数) ⑤反射的抑制:用0.5%硫酸溶液测定反射时,然后用止血钳夹住一侧前肢,给一个 较强的刺激,待动物安静后再测反射时,观察其有无延长? (2)反射弧的分析
20 为反射。将动物的高位中枢切除仅保留脊髓的动物成为脊髓动物（如脊蛙），它们产生的反 射活动为单纯的脊髓反射，由于失去高位中枢的控制反射活动较为简单，便与观察与分析反 射过程的某些特征。 反射活动的结构基础是反射弧。典型的反射弧由感受器、传入神经、神经中枢、传出 神经和效应器五个部分组成。反射弧必须保持完整性，才能引起反射，其中任何一个环节受 到破坏，反射活动就无法实现。 在反射活动中，由于神经元特别是中间神经元联系方式的不同，使反射活动表现出种种 特征。如：反射时（从刺激作用于感受器至效应器出现反应所经历的时间）的长短、反射活 动空间范围的大小、反射活动持续时间的久暂以及引起反射活动的刺激条件等等。 [实验对象] 蟾蜍。 [试剂与器材] 硫酸溶液（0．1%、0．3%、0．5%、1%）、纱布。蛙类手术器械、铁架台、血管钳一 把、秒表、玻璃平皿、肌夹、搪瓷杯、小滤纸（约 1cm×1cm）、刺激电极两个、双输出电 刺激器一台、烧杯。 [实验步骤] 1、实验准备 取蟾蜍一只，用粗剪刀由两侧口裂剪去上方头颅，制成脊蟾蜍。将动物俯卧位固定在蛙 板上，于右侧大腿背侧纵行剪开皮肤，在股二头肌和半膜肌之间的沟内找到坐骨神经干，在 神经干下穿一条细线备用。手术完后，用肌夹夹住动物下颌，悬挂在铁架台上。 2、实验项目 （l）反射中枢活动的某些基本特征 ①反射时的测定：在平皿内盛适量 0.1%硫酸溶液，将蟾蜍一侧后肢的一个脚趾尖浸入 硫酸溶液中，同时按动秒表记录从浸入时起至后肢发生屈曲所需要的时间，并立即将该足趾 浸入搪瓷杯水中浸洗数次，然后用纱布拭干。用上述方法重复三次，注意每次浸入趾尖的深 度要一致。三次所测时间的平均值，即为此反射的反射时（两次实验间隔至少 2～3min）。 然后平皿中分别换以 0.3%、0.5%、1%的硫酸溶液再重复上述测定，比较四种浓度硫酸所测 之反射时是否相同。 ②反射的空间范围（扩散）：将一个电极放在蟾蜍后肢的足面皮肤上，先给予弱的连续 电刺激，观察发生的反应，然后依次增加刺激强度，观察每次增加强度所引起反射的空间范 围有何变化。 ③反射的持续时间（后放）：在观察反射的空间范围中，还要注意观察随刺激强度的增 加，所引起反射持续的时间有何变化，并以秒表计算至刺激停止起到反射活动结束之间共持 续多少时间（后放）。 ④阈下刺激引起反射的条件：将两个刺激电极各连接刺激器的输出端，然后分别与蟾蜍 同一后肢相同的皮肤区域接触，用单个电刺激找出引起屈肌反射的阈值，再用略低于此阈值 的阈下刺激分别给以单个电刺激，如均不引起反应，然后把两个电极放在皮肤的同一区域， 距离不超过 0.5cm，当同时给予阈下刺激时，观察可否引起反射。 另外，只放一个电极在后肢皮肤上，在给一次阈下刺激不能引起反射的情况下，换以连 续刺激并依次增加刺激频率，记录哪一频率最早引起反射，并计算该频率刺激的时间间隔（即 刺激频率的倒数）。 ⑤反射的抑制：用 0．5%硫酸溶液测定反射时，然后用止血钳夹住一侧前肢，给一个 较强的刺激，待动物安静后再测反射时，观察其有无延长？ （2）反射弧的分析