强壮有力，双目明亮有神，反应灵敏，皮毛柔软有光泽，无脱毛、蓬乱现象。眼无分泌物或样积垢，肛门干净，体温正常。2.年龄动物年龄对实验结果有影响，急性实验一般选用成年动物，因其机能活动和生理反应已达到正常水平，手术耐受性好：若进行慢性实验，还有术后恢复快的优点。而幼龄及老年动物则只用于某些特殊实验。3.种属选择具体根据实验内容而定，原则是动物的解剖、生理特点应尽量符合实验要求。例如家免颈部的迷走神经、交感神经和主动脉神经（又名减压神经）各自成束，适宜于观察动脉血压的神经、体液调节和减压神经放电；而豚鼠中耳和内耳的解剖结构特殊，有利于观察微音器效应和迷路机能实验。4.性别根据阴囊内有睾丸下垂（环境温度高时更明显），尿道与肛门距离较远、按压生殖器部位有阴茎露出以及腹部无乳头为雄性；反之，则为雌性。5.动物实验前准备一般在进行动物实验前12h停止喂食，但仍需喂水。若进行慢性实验，还需对动物进行适当的训练，以了解该动物是否适合本实验并使其熟悉环境与实验者。手术前一天要给动物做清洁处理，必要时洗澡，以利消毒，术后要加强喂养与护理。二、动物实验的一般操作方法（一）动物的编号、捉拿和固定1.动物的编号犬、免等动物可用特制的号码牌固定于耳。白色家免和小动物可用3-5%的黄色苦味酸溶液涂于毛上标号。如编号1-10号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后肢的左、中、右部共九个区域，从右到左1-9号，第10号不涂黄色（图1-1），如加上其它颜色的染料（0.5%中性红或品红溶液）还可进行1-100号和1-1000号等更多编号。图1-1小白鼠背部编号12
12 强壮有力，双目明亮有神，反应灵敏，皮毛柔软有光泽，无脱毛、蓬乱现象。眼无分泌物或 痂样积垢，肛门干净，体温正常。 2. 年龄 动物年龄对实验结果有影响，急性实验一般选用成年动物，因其机能活动和生理反应已 达到正常水平，手术耐受性好；若进行慢性实验，还有术后恢复快的优点。而幼龄及老年动 物则只用于某些特殊实验。 3. 种属选择 具体根据实验内容而定，原则是动物的解剖、生理特点应尽量符合实验要求。例如家兔 颈部的迷走神经、交感神经和主动脉神经（又名减压神经）各自成束，适宜于观察动脉血压 的神经、体液调节和减压神经放电；而豚鼠中耳和内耳的解剖结构特殊，有利于观察微音器 效应和迷路机能实验。 4. 性别 根据阴囊内有睾丸下垂（环境温度高时更明显），尿道与肛门距离较远、按压生殖器部 位有阴茎露出以及腹部无乳头为雄性；反之，则为雌性。 5. 动物实验前准备 一般在进行动物实验前 12h 停止喂食，但仍需喂水。若进行慢性实验，还需对动物进行 适当的训练，以了解该动物是否适合本实验并使其熟悉环境与实验者。手术前一天要给动物 做清洁处理，必要时洗澡，以利消毒，术后要加强喂养与护理。 二、动物实验的一般操作方法 （一）动物的编号、捉拿和固定 1. 动物的编号 犬、兔等动物可用特制的号码牌固定于耳。白色家兔和小动物可用 3-5%的黄色苦味酸 溶液涂于毛上标号。如编号 1-10 号时，将小白鼠背部分前肢、腰部、后肢的左、中、右部 共九个区域，从右到左 1-9 号，第 10 号不涂黄色（图 1-1），如加上其它颜色的染料（0.5% 中性红或品红溶液）还可进行 1-100 号和 1-1000 号等更多编号。 图 1-1 小白鼠背部编号
2.动物的捉拿和固定（1）小鼠右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食指沿其背抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。另一抓法是只用手，用食指和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。前一种方法易学，后一种方法便于快速提拿。（见图1-2，1-3图1-2小白鼠双手捉持法图1-3小白鼠单手捉持法（2）大鼠首先戴好防护手套：用右手拇指和食指抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲养盒的面罩上。左手顺势按、卡在大鼠躯干背部，稍加压力向头颈部滑行。以左手拇指和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余三指和手掌握住大鼠背部皮肤，完成抓取保定。应避免用力过大造成大鼠室息死亡。根据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳绑其四肢固定于大鼠手术板上。（见图1-4）图1-4：大自鼠双手捉持法（3）豚鼠以左手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与左手拇指与食指之间，轻轻扣住颈胸部，右手抓住两后肢（对体重较大的豚鼠则可托起其臀部），使腹部向上。抓豚鼠时，一般不要抓腰腹部位，否则易造成肝破裂而引起死亡。（如图1-5）。13
13 2. 动物的捉拿和固定 （1）小鼠 右手抓住其尾，放在实验台上或鼠笼铁纱网上，在其向前爬时，左手拇指及食指沿其背 抓住两耳及头颈部皮肤，并以左手的小指和掌部夹住鼠尾固定。另一抓法是只用手，用食指 和拇指抓住鼠尾后再用小指和掌部夹住鼠尾，以拇指及食指捏住其颈部皮肤。前一种方法易 学，后一种方法便于快速捉拿。（见图 1-2，1-3） 图 1-2 小白鼠双手捉持法 图 1-3 小白鼠单手捉持法 （2）大鼠 （3）豚鼠 以左手抓住豚鼠头颈部，将其两前肢在豚鼠头与左手拇指与食指之间，轻轻扣住颈胸部， 右手抓住两后肢(对体重较大的豚鼠则可托起其臀部)，使腹部向上。抓豚鼠时，一般不要抓 腰腹部位，否则易造成肝破裂而引起死亡。（如图 1-5）。 首先戴好防护手套；用右手拇指和食指 抓住大鼠尾巴中部将大鼠提起，放在大鼠饲 养盒的面罩上。左手顺势按、卡在大鼠躯干 背部，稍加压力向头颈部滑行。以左手拇指 和食指捏住大鼠两耳后部的头颈皮肤，其余 三指和手掌握住大鼠背部皮肤，完成抓取保 定。应避免用力过大造成大鼠窒息死亡。根 据实验需要麻醉或固定大鼠于鼠笼内或用绳 绑其四肢固定于大鼠手术板上。（见图 1-4） 图 1-4 大白鼠双手捉持法
图1-5豚鼠的捉持法（4）兔用手抓起免脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。以另一手托起免的臀部。将免仰卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。另一人将绳子用活结捆绑免的四肢，使免腹部向上固定在免手术台上。头部则用兔头固定夹固定，也可用棉线将免的门牙固定于免手术台上的柱子上，后者更常用（图1-6）。图1-6兔的捉持法（5）蛙和蟾蜍通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，用拇指压住右前肢，将下肢拉直，用无名指及小指夹住（图1-7)。图1-7蛙和蟾蜍的捉持法14
14 图 1-5 豚鼠的捉持法 （4）兔 用手抓起兔脊背近后颈部皮肤，手抓面积应尽量大些。以另一手托起兔的臀部。将兔仰 卧固定时，一手抓住颈部皮肤，另一只手顺着腹部抚摸至膝关节处压住关节。另一人将绳子 用活结捆绑兔的四肢，使兔腹部向上固定在兔手术台上。头部则用兔头固定夹固定，也可用 棉线将兔的门牙固定于兔手术台上的柱子上，后者更常用（图 1-6）。 图 1-6 兔的捉持法 （5）蛙和蟾蜍 通常以左手握持，用食指和中指夹住左前肢，用拇指压住右前肢，将下肢拉直，用无名 指及小指夹住（图 1-7）。 图 1-7 蛙和蟾蜍的捉持法
（二）实验动物的去毛动物去毛是手术野的皮肤准备之一。原则是去毛范围应大于手术野，不破坏皮肤的完整性。具体方法有：1.剪毛法常用于免、犬去毛。操作时用剪刀紧贴皮肤依次剪毛，切忌提起皮肤，否则将剪破皮肤。剪下的毛应放入盛有少量水的杯中，并可用湿纱布擦去已剪断的毛。2.拨毛法一般用于免和犬的静脉输液部位。拨毛除使视野清晰外，还能刺激局部血管扩张。3.剃毛法进行动物的慢性实验时用。4.脱毛法用于动物的无菌手术，一般先将手术野的毛剪短，用脱毛液在局部涂一层（注意手不要直接接触脱毛液），待2～3min后用清水洗去脱落的毛，再用纱布擦干后涂一层凡士林。在此介绍两种脱毛液配方。配方1：硫化钠3，肥皂粉1，淀粉7，加水调成糊状。配方2：8%的硫化钠水溶液。（三）给药途径和方法1.灌胃法（i.g.）适用于大鼠、小鼠、犬和免等动物。包括强制灌胃给药和自动口服给药两种。自动口服给药是指将药物拌入饲料或饮水中由动物自动摄入，缺点是剂量难以掌握。而强制灌胃给药因能做到剂量准确被更多被采用，但此法如果操作不当易造成动物死亡。（1）小鼠灌胃法左手用力适中仰持小鼠，使其头颈部充分伸直。右手将连有小鼠灌胃管的注射器，小心自口角插入口腔，用灌胃管压住上聘，使口腔与食道成一条直线，从舌面部紧沿上聘进入食道，注入药物，插管深度约3cm。操作时应避免将灌胃管插入气管。灌注量：0.1~0.3mL/10g体重（如图1-8）。（2）大鼠灌胃法左手用力适中仰持大鼠，使其头颈部充分伸直。右手将连有大鼠灌胃管的注射器，小心自口角插入口腔，用灌胃管压住上聘，使口腔与食道成一条直线，从舌面部紧沿上聘进入食道，注入药物，插管深度约5cm。操作时应避免将灌胃管插入气管，灌药量为1～2mL/100g体重（如图1-8)。（3）兔灌胃法利用兔固定箱一手将（张口器）固定于兔口中，另一手插灌胃管（常用导尿管代替）如无固定箱，则一人左手固定免头及身体，右手将含嘴插入免口中。另一人将导尿管从含嘴15
15 （二）实验动物的去毛 动物去毛是手术野的皮肤准备之一。原则是去毛范围应大于手术野，不破坏皮肤的完整 性。具体方法有： 1. 剪毛法 常用于兔、犬去毛。操作时用剪刀紧贴皮肤依次剪毛，切忌提起皮肤，否则将剪破皮肤。 剪下的毛应放入盛有少量水的杯中，并可用湿纱布擦去已剪断的毛。 2. 拨毛法 一般用于兔和犬的静脉输液部位。拨毛除使视野清晰外，还能刺激局部血管扩张。 3. 剃毛法 进行动物的慢性实验时用。 4. 脱毛法 用于动物的无菌手术，一般先将手术野的毛剪短，用脱毛液在局部涂一层（注意手不要 直接接触脱毛液），待 2～3min 后用清水洗去脱落的毛，再用纱布擦干后涂一层凡士林。在 此介绍两种脱毛液配方。配方 1：硫化钠 3，肥皂粉 1，淀粉 7，加水调成糊状。配方 2：8% 的硫化钠水溶液。 （三）给药途径和方法 1. 灌胃法（i.g.） 适用于大鼠、小鼠、犬和兔等动物。包括强制灌胃给药和自动口服给药两种。自动口服 给药是指将药物拌入饲料或饮水中由动物自动摄入，缺点是剂量难以掌握。而强制灌胃给药 因能做到剂量准确被更多被采用，但此法如果操作不当易造成动物死亡。 （1）小鼠灌胃法 左手用力适中仰持小鼠，使其头颈部充分伸直。右手将连有小鼠灌胃管的注射器，小心 自口角插入口腔，用灌胃管压住上腭，使口腔与食道成一条直线，从舌面部紧沿上腭进入食 道，注入药物，插管深度约 3cm。操作时应避免将灌胃管插入气管。灌注量：0.1～0.3mL/10g 体重（如图 1-8）。 （2）大鼠灌胃法 左手用力适中仰持大鼠，使其头颈部充分伸直。右手将连有大鼠灌胃管的注射器，小心 自口角插入口腔，用灌胃管压住上腭，使口腔与食道成一条直线，从舌面部紧沿上腭进入食 道，注入药物，插管深度约 5cm。操作时应避免将灌胃管插入气管，灌药量为 1～2mL/100g 体重（如图 1-8）。 （3）兔灌胃法 利用兔固定箱一手将（张口器）固定于兔口中，另一手插灌胃管（常用导尿管代替）。 如无固定箱，则一人左手固定兔头及身体，右手将含嘴插入兔口中。另一人将导尿管从含嘴
中央小孔插入约15cm左右。将导尿管置于盛有少量清水的小烧杯中，如无气泡表示插管正确，此时可将药液慢慢注入。最后注少量空气或干净水使导管中的残余药液全部灌入胃中。灌毕先将导尿管慢慢抽出，最后取出含嘴。兔在灌胃前一般应禁食。灌药量一般为10mL/kg体重（如图1-9）。图1-8小白鼠和大白鼠的灌胃法开口器0图1-9兔的灌胃法2. 注射给药（1）皮下注射将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。对动物而言，常用的注射部位有颈、背、腋下、侧腹或臀部等，最常选用的是背部。注射时左手提起皮肤，右手持针刺入皮下。若针易于左右摆动，表明已刺入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地将药物注入皮下。注意在拨针时应轻按进针部位，避免药液外漏（如图1-10）。16
16 中央小孔插入约 15cm 左右。将导尿管置于盛有少量清水的小烧杯中，如无气泡表示插管正 确，此时可将药液慢慢注入。最后注少量空气或干净水使导管中的残余药液全部灌入胃中。 灌毕先将导尿管慢慢抽出，最后取出含嘴。兔在灌胃前一般应禁食。灌药量一般为 10mL/kg 体重（如图 1-9）。 图 1-8 小白鼠和大白鼠的灌胃法 图 1-9 兔的灌胃法 2. 注射给药 （1）皮下注射 将药液注入皮下结缔组织，经毛细血管、淋巴管吸收进入血液循环。对动物而言，常用 的注射部位有颈、背、腋下、侧腹或臀部等，最常选用的是背部。注射时左手提起皮肤，右 手持针剌入皮下。若针易于左右摆动，表明已剌入皮下，再轻轻抽吸，如无回血，可缓慢地 将药物注入皮下。注意在拨针时应轻按进针部位，避免药液外漏（如图 1-10）。 开口器